| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-23页 |
| 1.1 多糖的概述 | 第9-14页 |
| 1.1.1 多糖的定义及分类 | 第9页 |
| 1.1.2 多糖的生物活性 | 第9-12页 |
| 1.1.2.1 抗肿瘤活性 | 第10页 |
| 1.1.2.2 抗病毒活性 | 第10页 |
| 1.1.2.3 降血糖活性 | 第10-11页 |
| 1.1.2.4 抗氧化活性 | 第11页 |
| 1.1.2.5 抗凝血活性 | 第11-12页 |
| 1.1.3 多糖的结构层次 | 第12页 |
| 1.1.4 多糖的生物活性与构效关系 | 第12-13页 |
| 1.1.5 多糖结构的测定 | 第13-14页 |
| 1.1.5.1 多糖一级结构的测定 | 第13-14页 |
| 1.1.5.2 多糖高级结构的测定 | 第14页 |
| 1.2 微生物胞外多糖的研究概况 | 第14-20页 |
| 1.2.1 微生物胞外多糖的定义 | 第14-15页 |
| 1.2.2 微生物胞外多糖的生物合成 | 第15-16页 |
| 1.2.3 微生物胞外多糖的分离纯化 | 第16-17页 |
| 1.2.3.1 发酵液的预处理 | 第16页 |
| 1.2.3.2 多糖的分离 | 第16页 |
| 1.2.3.3 去除蛋白质 | 第16-17页 |
| 1.2.3.4 透析 | 第17页 |
| 1.2.3.5 多糖的纯化 | 第17页 |
| 1.2.3.6 干燥与保存 | 第17页 |
| 1.2.4 微生物胞外多糖的应用 | 第17-20页 |
| 1.2.4.1 在食品领域的应用 | 第17-18页 |
| 1.2.4.2 在医药领域的应用 | 第18-19页 |
| 1.2.4.3 在污水处理方面的应用 | 第19-20页 |
| 1.2.4.4 在水产养殖中的应用 | 第20页 |
| 1.3 海洋微生物多糖抗氧化的研究现状 | 第20-21页 |
| 1.3.1 海洋微生物的简介 | 第20-21页 |
| 1.3.2 海洋微生物胞外多糖的抗氧化活性 | 第21页 |
| 1.4 研究的内容 | 第21-22页 |
| 1.5 研究的意义 | 第22-23页 |
| 第二章 三株海洋酵母菌胞外多糖的提取、结构及抗氧化活性 | 第23-40页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第23-26页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第23页 |
| 2.1.2 培养基 | 第23页 |
| 2.1.3 实验药品 | 第23-24页 |
| 2.1.4 实验试剂 | 第24-25页 |
| 2.1.5 仪器设备 | 第25-26页 |
| 2.1.6 辅助器材 | 第26页 |
| 2.2 实验方法 | 第26-32页 |
| 2.2.1 胞外多糖粗品的提取 | 第26-28页 |
| 2.2.1.1 海洋酵母菌的发酵培养 | 第26页 |
| 2.2.1.2 菌种保藏 | 第26-27页 |
| 2.2.1.3 胞外多糖的提取 | 第27页 |
| 2.2.1.4 胞外多糖液的透析 | 第27页 |
| 2.2.1.5 冷冻干燥 | 第27-28页 |
| 2.2.2 多糖理化性质的检测 | 第28-30页 |
| 2.2.2.1 多糖的纯度测定 | 第28-29页 |
| 2.2.2.2 蛋白含量的测定 | 第29-30页 |
| 2.2.2.3 紫外(UV)光谱法检测蛋白杂质 | 第30页 |
| 2.2.3 多糖结构分析 | 第30-31页 |
| 2.2.4 胞外多糖抗氧化活性分析 | 第31-32页 |
| 2.2.4.1 多糖还原力测定 | 第31页 |
| 2.2.4.2 多糖对O_2-·自由基的清除作用 | 第31页 |
| 2.2.4.3 多糖对·OH自由基的清除作用 | 第31-32页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第32-38页 |
| 2.3.1 多糖理化性质的检测 | 第32-33页 |
| 2.3.1.1 多糖的纯度测定 | 第32页 |
| 2.3.1.2 蛋白含量的测定 | 第32页 |
| 2.3.1.3 紫外(UV)光谱法检测蛋白杂质 | 第32-33页 |
| 2.3.2 多糖结构分析 | 第33-35页 |
| 2.3.3 胞外多糖抗氧化活性分析 | 第35-37页 |
| 2.3.3.1 多糖还原力测定 | 第35-36页 |
| 2.3.3.2 多糖对O_2-·自由基的清除作用 | 第36-37页 |
| 2.3.3.3 多糖对·OH自由基的清除作用 | 第37页 |
| 2.3.4 讨论 | 第37-38页 |
| 2.3.4.1 胞外多糖的纯度 | 第37-38页 |
| 2.3.4.2 多糖结构分析 | 第38页 |
| 2.3.4.3 胞外多糖抗氧化活性分析 | 第38页 |
| 2.4 本章小结 | 第38-40页 |
| 第三章 胞外多糖EPS9在海参养殖中的应用 | 第40-51页 |
| 3.1 引言 | 第40页 |
| 3.2 材料与仪器 | 第40-43页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第40-41页 |
| 3.2.2 实验药品 | 第41页 |
| 3.2.3 实验试剂 | 第41-43页 |
| 3.2.4 仪器设备 | 第43页 |
| 3.2.5 辅助器材 | 第43页 |
| 3.3 实验方法 | 第43-48页 |
| 3.3.1 实验前期准备 | 第43页 |
| 3.3.2 海参的喂养 | 第43-44页 |
| 3.3.3 海参体重的测量 | 第44页 |
| 3.3.4 多糖对海参肠道消化酶的影响 | 第44-48页 |
| 3.3.4.1 粗酶液的提取 | 第44页 |
| 3.3.4.2 海参肠道蛋白酶活力测定 | 第44-46页 |
| 3.3.4.3 海参肠道纤维素酶活力的测定 | 第46-47页 |
| 3.3.4.4 海参肠道淀粉酶的活力 | 第47-48页 |
| 3.4 实验结果与讨论 | 第48-50页 |
| 3.4.1 海参体重的测定 | 第48-49页 |
| 3.4.2 海参肠道消化酶活性的测定 | 第49页 |
| 3.4.3 讨论 | 第49-50页 |
| 3.4.3.1 多糖对海参体重的影响 | 第49-50页 |
| 3.4.3.2 多糖对海参肠道消化酶活力 | 第50页 |
| 3.5 本章小结 | 第50-51页 |
| 第四章 结论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-57页 |
| 致谢 | 第57页 |