水稻窄叶突变体dwarf and narrow leaf 1 (dndl1)的基因定位
摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
第1章 引言 | 第10-23页 |
1.1 水稻株型育种的研究进展 | 第10-11页 |
1.1.1 水稻株型的定义及育种阶段 | 第10-11页 |
1.1.2 水稻叶片在株型育种中重要性 | 第11页 |
1.2 水稻叶形研究进展 | 第11-14页 |
1.2.1 与水稻叶片大小相关基因的克隆研究 | 第12页 |
1.2.2 叶片形状相关基因的克隆 | 第12-14页 |
1.3 水稻窄叶突变体基因的研究进展 | 第14-18页 |
1.3.1 水稻窄叶相关基因的定位和克隆情况 | 第14-16页 |
1.3.2 与株高性状伴随的基因 | 第16-17页 |
1.3.3 与叶片卷曲性状相关基因 | 第17页 |
1.3.4 与分蘖性状相关基因 | 第17页 |
1.3.5 叶夹角性状相关基因 | 第17页 |
1.3.6 窄叶突变体基因在育种上的应用 | 第17-18页 |
1.4 水稻叶形突变体的获得方式 | 第18-19页 |
1.4.1 自发突变 | 第18页 |
1.4.2 其他突变体 | 第18-19页 |
1.5 基因定位中的分子标记选择 | 第19-20页 |
1.5.1 常见的分子标记 | 第19页 |
1.5.2 InDel标记 | 第19-20页 |
1.6 MutMap测序 | 第20-21页 |
1.6.1 MutMap原理 | 第20页 |
1.6.2 MutMap测序使用范围 | 第20页 |
1.6.3 MutMap优势 | 第20-21页 |
1.6.4 MutMap技术需求 | 第21页 |
1.7 本实验的目的及意义 | 第21-23页 |
第2章 材料与方法 | 第23-31页 |
2.1 主要试剂和仪器 | 第23页 |
2.1.1 实验试剂 | 第23页 |
2.1.2 主要仪器 | 第23页 |
2.2 材料与方法 | 第23-31页 |
2.2.1 实验材料 | 第23-24页 |
2.2.2 F2定位群体的构建 | 第24页 |
2.2.3 突变体和野生型亲本农艺性状考察 | 第24页 |
2.2.4 突变体及杂交亲本的叶绿素含量的测定 | 第24页 |
2.2.5 突变体及野生型亲本的CAT活性测定 | 第24-25页 |
2.2.6 突变体及野生型亲本间SOD活性的测定 | 第25-26页 |
2.2.8 DNA的提取 | 第26页 |
2.2.9 目的基因的初步定位 | 第26-27页 |
2.2.10 InDel标记分析 | 第27-28页 |
2.2.11 琼脂糖电泳 | 第28页 |
2.2.12 目的条带回收 | 第28页 |
2.2.13 大肠杆菌感受态细胞的制备 | 第28-29页 |
2.2.14 目的片段与pMD19-T载体的连接 | 第29页 |
2.2.15 大肠杆菌感受态转化目的片段 | 第29-30页 |
2.2.16 目的片段质粒提取 | 第30-31页 |
第3章 结果与分析 | 第31-43页 |
3.1 突变体表型鉴定和主要农艺性状分析 | 第31-33页 |
3.2 突变体及野生型生理指标的测定 | 第33页 |
3.4 遗传分析 | 第33-34页 |
3.5 MutMap测序初步定位结果 | 第34-38页 |
3.6 InDel标记的开发 | 第38-39页 |
3.7 多态性InDel标记的筛选 | 第39-40页 |
3.8 突变体基因精细定位 | 第40-41页 |
3.9 候选基因的筛选 | 第41-43页 |
第4章 讨论 | 第43-46页 |
4.1 水稻第7号染色体上相关窄叶基因的研究分析 | 第43-44页 |
4.2 基因定位中存在的问题 | 第44页 |
4.3 窄叶基因在育种上的应用 | 第44-45页 |
4.4 突变体dnal1的研究展望 | 第45-46页 |
本实验主要结论 | 第46-47页 |
本实验创新之处 | 第47-48页 |
致谢 | 第48-49页 |
参考文献 | 第49-55页 |
攻读学位期间的研究成果 | 第55页 |