| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 1 前言 | 第11页 |
| 2 文献综述 | 第11-21页 |
| 2.1 文献检索 | 第12-14页 |
| 2.1.1 文献检索策略 | 第12页 |
| 2.1.2 检索范围和步骤 | 第12页 |
| 2.1.3 确定纳入与排除标准 | 第12-13页 |
| 2.1.4 文献质量评价 | 第13页 |
| 2.1.5 文献信息提取 | 第13页 |
| 2.1.6 数据处理 | 第13-14页 |
| 2.2 结果 | 第14-18页 |
| 2.2.1 纳入文献的基本信息 | 第14-16页 |
| 2.2.2 运动对学习记忆的影响 | 第16-18页 |
| 2.3 讨论 | 第18-21页 |
| 2.3.1 中等负荷运动对大鼠学习记忆能力的影响 | 第18-19页 |
| 2.3.2 大负荷运动对大鼠学习记忆能力的影响 | 第19页 |
| 2.3.3 影响大鼠学习记忆能力的生物学机制 | 第19-21页 |
| 2.4 结论 | 第21页 |
| 3 材料与方法 | 第21-29页 |
| 3.1 实验对象及分组 | 第21-22页 |
| 3.2 动物模型的构建 | 第22-23页 |
| 3.2.1 构建衰老大鼠模型（注射D-半乳糖） | 第22页 |
| 3.2.2 构建运动干预模型 | 第22页 |
| 3.2.3 Morris水迷宫实验（Morris water maze， MWM） | 第22-23页 |
| 3.3 动物取材 | 第23页 |
| 3.4 自由基的检测 | 第23-24页 |
| 3.5 SABC免疫组化检测额叶BDNF的表达 | 第24页 |
| 3.6 real time PCR检测衰老大鼠额叶BDNF的mRNA基因的表达 | 第24-27页 |
| 3.6.1 准备工作 | 第24-25页 |
| 3.6.2 提取mRNA | 第25-26页 |
| 3.6.3 mRNA含量的测定以及质量的鉴定 | 第26页 |
| 3.6.4 Real-time PCR检测BDNF基因mRNA的表达 | 第26-27页 |
| 3.7 Western-blotting检测衰老大鼠额叶BDNF基因蛋白的表达 | 第27-29页 |
| 3.7.1 提取额叶基因总蛋白 | 第27-28页 |
| 3.7.2 测定额叶基因蛋白的浓度 | 第28页 |
| 3.7.3 western-bolting实验步骤及注意事项 | 第28-29页 |
| 3.8 图像处理与数理统计 | 第29页 |
| 4 结果 | 第29-41页 |
| 4.1 实验大鼠的一般情况 | 第29-30页 |
| 4.2 自由基的检测结果 | 第30-33页 |
| 4.2.1 SOD活性检测结果 | 第30-31页 |
| 4.2.2 GXH-PX活性检测结果 | 第31页 |
| 4.2.3 MDA含量检测结果 | 第31-33页 |
| 4.3 Morris水迷宫行为学检测结果 | 第33-36页 |
| 4.3.1 定位航行训练平均逃避潜伏期结果 | 第33-34页 |
| 4.3.2 空间探索实验分析 | 第34-36页 |
| 4.4 Real-time PCR检测结果 | 第36-38页 |
| 4.4.1 标准曲线的建立和扩增效率分析 | 第36页 |
| 4.4.2 反应特异性分析曲线 | 第36-37页 |
| 4.4.3 Real-time PCR检测BDNF基因的mRNA实验结果 | 第37-38页 |
| 4.5 额叶BDNF蛋白表达免疫组化结果 | 第38-39页 |
| 4.6 Western-bolting检测结果 | 第39-40页 |
| 4.7 相关性分析 | 第40-41页 |
| 5 分析与讨论 | 第41-45页 |
| 5.1 衰老模型的验证 | 第41-42页 |
| 5.2 不同时期有氧运动对衰老模型大鼠脑组织中自由基的影响 | 第42-43页 |
| 5.3 不同时期有氧运动对急性衰老大鼠学习记忆的影响 | 第43-44页 |
| 5.4 不同时期有氧运动对衰老大鼠额叶BDNF基因及蛋白表达的影响 | 第44-45页 |
| 6 结论 | 第45-46页 |
| 致谢 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-50页 |
