| 摘要 | 第5-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 第1章 绪论 | 第11-37页 |
| 1.1 引言 | 第11-12页 |
| 1.2 研究背景 | 第12-28页 |
| 1.2.1 眼优势 | 第12页 |
| 1.2.2 眼优势可塑性 | 第12-14页 |
| 1.2.3 常用的眼优势可塑性的检测方法 | 第14-19页 |
| 1.2.4 目前对眼优势可塑性的研究进展与状况 | 第19-28页 |
| 1.3 本课题的研究内容 | 第28-35页 |
| 1.3.1 PDE4及其抑制剂 | 第30-32页 |
| 1.3.2 AKAP的介绍 | 第32-35页 |
| 1.4 实验设计 | 第35-37页 |
| 第2章 实验材料与方法 | 第37-51页 |
| 2.1 实验动物 | 第37页 |
| 2.2 暗饲养 | 第37页 |
| 2.3 蛋白质印迹法 | 第37-40页 |
| 2.4 脑内埋管与注射药物 | 第40页 |
| 2.5 缓释微泵埋藏手术 | 第40-41页 |
| 2.6 单侧眼睑缝合手术 | 第41页 |
| 2.7 电生理记录 | 第41-43页 |
| 2.7.1 动物准备 | 第41-42页 |
| 2.7.2 视觉刺激和记录 | 第42-43页 |
| 2.8 灌流取脑 | 第43页 |
| 2.9 内源信号光学成像 | 第43-45页 |
| 2.10 AKAP5蛋白同源性分析 | 第45-46页 |
| 2.11 冰冻切片 | 第46页 |
| 2.12 尼氏染色 | 第46页 |
| 2.13 显微成像 | 第46-47页 |
| 2.14 数据统计与分析 | 第47-51页 |
| 2.14.1 电生理数据的统计分析 | 第47-48页 |
| 2.14.2 内源信号光学成像的数据统计分析 | 第48-51页 |
| 第3章 实验结果 | 第51-77页 |
| 3.1 小鼠PDE4D的表达水平与眼优势可塑性的时程相吻合 | 第51-52页 |
| 3.2 小鼠PDE4D的表达不依赖于视觉经验 | 第52-55页 |
| 3.3 PDE4的抑制剂rolipram对小鼠关键期内眼优势可塑性没有影响 | 第55-58页 |
| 3.4 PDE4的抑制剂rolipram对幼猫关键期内眼优势可塑性没有影响 | 第58-67页 |
| 3.5 敲除AKAP150会影响小鼠关键期内的眼优势可塑性 | 第67页 |
| 3.6 施加St-Ht31会影响小鼠关键期内的眼优势可塑性 | 第67-71页 |
| 3.7 关键期内幼猫V1区施加St-Ht31对眼优势可塑性没有影响 | 第71-77页 |
| 第4章 总结与讨论 | 第77-85页 |
| 4.1 本研究的创新处 | 第77-78页 |
| 4.2 结果讨论 | 第78-82页 |
| 4.2.1 关于PDE4相关实验的讨论 | 第78-80页 |
| 4.2.2 关于AKAP相关实验的讨论 | 第80-82页 |
| 4.3 研究意义与展望 | 第82-85页 |
| 4.3.1 研究意义 | 第82-83页 |
| 4.3.2 展望 | 第83-85页 |
| 其他工作 | 第85-97页 |
| 参考文献 | 第97-117页 |
| 附录 | 第117-119页 |
| 致谢 | 第119-121页 |
| 在读期间发表的学术论文与取得的其他研究成果 | 第121-123页 |
| 个人简历 | 第123页 |
