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绵羊毛囊皮质层特异表达基因KAP11.1上游调控序列研究

摘要第8-10页
Abstract第10-11页
缩略词表(Abbreviations)第12-13页
1 前言第13-22页
    1.1 研究问题的由来第13页
    1.2 毛囊表达的角蛋白及角蛋白关联蛋白对毛发品质具有重要调控作用第13-14页
    1.3 KAP11.1 基因在毛囊皮质层特异表达第14-16页
    1.4 基因上游调控序列对基因的表达具有重要调控作用第16-17页
    1.5 与皮肤或毛囊生长发育有关的转录因子第17-20页
        1.5.1 Hoxc13第17-18页
        1.5.2 Tst-1/Oct6第18-19页
        1.5.3 Ets家族第19页
        1.5.4 其他转录因子第19-20页
    1.6 目前用于毛囊基因研究的Cre鼠进展第20-21页
    1.7 研究的目的及意义第21-22页
2 材料与方法第22-45页
    2.1 本研究的的技术路线第22页
    2.2 材料第22-24页
        2.2.1 组织样品第22-23页
        2.2.3 菌株、载体和细胞第23-24页
        2.2.4 小鼠第24页
    2.3 主要试剂和设备第24-26页
        2.3.1 分子试验主要试剂第24-25页
        2.3.2 主要试剂配制第25页
        2.3.3 主要仪器设备第25-26页
    2.4 主要分子生物学软件和数据库第26-27页
        2.4.1 主要分子生物学软件第26页
        2.4.2 主要数据库及在线分析工具第26页
        2.4.3 核心启动子及转录因子预测第26-27页
    2.5 方法第27-45页
        2.5.1 启动子双荧光素酶报告基因载体的构建第27-32页
        2.5.2 细胞的复苏、常规培养及冻存第32-33页
        2.5.3 细胞转染及双荧光素酶活性的测定第33页
        2.5.4 KAP11.1 基因上游序列中-251 ~ -148bp区域同源比较分析第33-34页
        2.5.5 启动子双荧光素酶报告基因突变载体的构建第34-36页
        2.5.6 细胞核蛋白的提取第36-37页
        2.5.7 Western blotting分析第37-38页
        2.5.8 RAN干扰技术第38页
        2.5.9 凝胶电泳迁移实验(EMSA)第38-42页
        2.5.10 免疫荧光组化技术第42-45页
3 结果第45-59页
    3.1 绵羊KAP11.1 基因 5’端上游调控序列研究第45-55页
        3.1.1 绵羊KAP11.1 基因上游序列生物信息学分析第45页
        3.1.2 绵羊KAP11.1 基因上游序列截短体构建及双荧光素酶活性分析第45-47页
        3.1.3 绵羊KAP11.1 基因上游-251 ~ -148bp区域转录因子结合位点预测第47页
        3.1.4 Hoxc13、Tst-1/Oct6和Ets1转录因子结合位点的点突变分析第47-49页
        3.1.5 利用RNA干扰技术进一步验证Hoxc13、Tst-1/Oct6和Ets1转录因子结合位点的调控作用第49-51页
        3.1.6 利用凝胶电泳迁移实验验证绵羊KAP11.1 基因上游-251 ~ -148bp区域与候选转录因子存在互作第51-55页
    3.2 表达Cre重组酶的KAP11.1-Cre转基因载体的构建第55-59页
        3.2.1 表达Cre重组酶的KAP11.1-Cre转基因载体的构建第55-58页
        3.2.2 毛囊皮质层特异表达Cre重组酶的转基因小鼠的制备第58-59页
4 讨论第59-63页
    4.1 绵羊KAP11.1 基因上游序列生物信息学分析第59页
    4.2 绵羊KAP11.1 基因上游序列截短分析第59-60页
    4.3 Hoxc13、Tst-1/Oct6和Ets1转录因子及其结合位点的调控分析第60-61页
    4.4 Hoxc13、Tst-1/Oct6和Ets1转录因子在绵羊及小鼠毛囊中表达模式分析第61-63页
5 小结第63-64页
    5.1 本研究的主要结论第63页
    5.2 本研究的创新点及特色第63页
    5.3 进一步工作建议第63-64页
参考文献第64-73页
致谢第73页

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