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大肠杆菌MEP途径的改造及用于(-)-柠檬烯生物合成的研究

摘要第5-6页
ABSTRACT第6页
第1章 前言第10-19页
    1.1 柠檬烯简介第10-11页
    1.2 植物中柠檬烯的合成第11-16页
        1.2.1 柠檬烯合成的前体途径第12-14页
        1.2.2 香叶基焦磷酸合酶(GPPS)第14-15页
        1.2.3 (-)-柠檬烯合酶(LS)第15-16页
    1.3 微生物中萜类化合物的异源合成第16-17页
        1.3.1 单萜的异源生物合成第16-17页
        1.3.2 二萜的异源生物合成第17页
        1.3.3 三萜的异源生物合成第17页
    1.4 本课题的主要内容和研究意义第17-19页
        1.4.1 主要研究意义第17-18页
        1.4.2 主要研究内容第18-19页
第2章 大肠杆菌中柠檬烯合成质粒的构建及优化第19-39页
    2.1 引言第19页
    2.2 实验材料第19-22页
        2.2.1 试剂第19-20页
        2.2.2 培养基第20-21页
        2.2.3 实验仪器第21页
        2.2.4 基因、质粒和菌株第21-22页
    2.3 实验方法第22-34页
        2.3.1 培养液大肠杆菌菌体浓度的测定第22页
        2.3.2 菌体干重和OD_(600)的关系第22-23页
        2.3.3 (-)-柠檬烯的鉴定和浓度测定第23-24页
        2.3.4 大肠杆菌基因组DNA的提取第24页
        2.3.5 大肠杆菌中质粒的提取第24页
        2.3.6 PCR反应条件第24-26页
        2.3.7 限制性核酸内切酶酶切以及T4 DNA连接酶连接第26-28页
        2.3.8 ls-gpps串联片段的构建第28-29页
        2.3.9 gpps-ls串联片段的构建第29-30页
        2.3.10 ls-Ecgpps串联片段的构建第30-32页
        2.3.11 Ecgpps-ls串联片段的构建第32-33页
        2.3.12 柠檬烯合成途径质粒的构建以及基因工程E.coli菌株的构建第33页
        2.3.13 大肠杆菌工程菌株生物量和柠檬烯合成能力的测定第33-34页
    2.4 结果和分析第34-38页
        2.4.1 柠檬烯合成质粒的构建第34-35页
        2.4.2 柠檬烯合成途径质粒的构建第35页
        2.4.3 最优合成柠檬烯重组E.coli的筛选第35-36页
        2.4.4 合成柠檬烯重组E.coli的生长量的比较第36-38页
    2.5 本章小结第38-39页
第3章 大肠杆菌自身MEP途径的强化第39-53页
    3.1 引言第39页
    3.2 实验材料第39-42页
        3.2.1 试剂第39-40页
        3.2.2 培养基第40-41页
        3.2.3 实验仪器第41页
        3.2.4 基因、质粒及菌株第41-42页
    3.3 实验方法第42-48页
        3.3.1 大肠杆菌基因组和质粒的提取第42页
        3.3.2 PCR反应条件第42-43页
        3.3.3 限制性核酸内切酶酶切以及T4 DNA连接酶连接第43-45页
        3.3.4 dxs-idi串联片段的构建第45-46页
        3.3.5 MEP途径改造质粒的构建第46-47页
        3.3.6 共表达菌株的构建第47-48页
        3.3.7 E.coli工程菌株生长和柠檬烯合成能力的测定第48页
    3.4 结果与讨论第48-51页
        3.4.1 dxs-idi串联片段的构建第48页
        3.4.2 MEP途径质粒的构建第48页
        3.4.3 最优合成柠檬烯重组E.coli的筛选第48-51页
        3.4.4 合成柠檬烯重组E.coli的生长量的比较第51页
    3.5 小结第51-53页
第4章 大肠杆菌两相培养系统的优化第53-64页
    4.1 引言第53页
    4.2 实验材料第53-55页
        4.2.1 试剂第53-54页
        4.2.2 培养基第54-55页
        4.2.3 实验仪器第55页
        4.2.4 质粒及菌株第55页
    4.3 实验方法第55-57页
        4.3.1 两相培养体系内正十六烷体积的优化第55-56页
        4.3.2 基础培养基的选择第56页
        4.3.3 基础培养基内组分的优化第56-57页
    4.4 结果和分析第57-63页
        4.4.1 两相培养体系内正十六烷体积的优化第57-58页
        4.4.2 基础培养基的选择第58-60页
        4.4.3 基础培养基内组分的优化第60-63页
    4.5 本章小结第63-64页
结论和展望第64-66页
参考文献第66-72页
附录第72-76页
攻读硕士期间撰写的论文第76-77页
致谢第77页

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