摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
第一章 绪论 | 第11-21页 |
1.1 药用植物重楼研究概述 | 第12-14页 |
1.1.1 重楼的生物学特性 | 第12-13页 |
1.1.2 重楼的化学成分和药用价值 | 第13-14页 |
1.1.3 重楼的经济价值和资源现状 | 第14页 |
1.2 种子休眠研究概况 | 第14-16页 |
1.2.1 种子休眠概念及其原因 | 第14页 |
1.2.2 解除种子休眠的方法 | 第14-15页 |
1.2.3 重楼种子形态结构及其休眠研究进展 | 第15-16页 |
1.3 重楼组织培养研究概况 | 第16页 |
1.4 毛状根的遗传转化及应用 | 第16-19页 |
1.4.1 发根农杆菌及Ri质粒研究 | 第16-17页 |
1.4.2 毛状根的形成过程 | 第17-18页 |
1.4.3 毛状根的转化方法 | 第18页 |
1.4.4 毛状根的特征 | 第18页 |
1.4.5 毛状根的研究进展 | 第18-19页 |
1.5 实验的特点及研究意义 | 第19-20页 |
1.6 研究内容及技术路线 | 第20-21页 |
1.6.1 研究内容 | 第20页 |
1.6.2 技术路线 | 第20-21页 |
第二章 滇重楼种子休眠解除方法的研究 | 第21-29页 |
2.1 材料与方法 | 第21-23页 |
2.1.1 实验材料与消毒处理 | 第21页 |
2.1.2 实验试剂与配制方法 | 第21页 |
2.1.3 滇重楼种子休眠解除方法 | 第21-22页 |
2.1.4 未萌发种子的活力测定方法 | 第22页 |
2.1.5 实验设计 | 第22-23页 |
2.2 结果与分析 | 第23-26页 |
2.2.1 不同保湿时间对滇重楼种子萌发的影响 | 第23页 |
2.2.2 不同保湿液对滇重楼种子萌发的影响 | 第23-24页 |
2.2.3 不同营养基质对滇重楼种子萌发的影响 | 第24-25页 |
2.2.4 未萌发种子的活力测定结果 | 第25-26页 |
2.3 结论 | 第26-27页 |
2.4 讨论 | 第27-29页 |
2.4.1 低温层积和变温处理对滇重楼种子休眠解除的影响 | 第27页 |
2.4.2 种皮透性对种子休眠解除的影响 | 第27页 |
2.4.3 赤霉素和细胞分裂素对种子休眠解除的影响 | 第27-29页 |
第三章 滇重楼组织培养的研究 | 第29-38页 |
3.1 材料与方法 | 第29-31页 |
3.1.1 实验材料与消毒处理 | 第29-30页 |
3.1.2 实验试剂与配制方法 | 第30页 |
3.1.3 滇重楼愈伤组织诱导方法 | 第30页 |
3.1.4 实验设计 | 第30-31页 |
3.2 结果与分析 | 第31-36页 |
3.2.1 不同外植体部位对愈伤组织诱导的影响 | 第31-32页 |
3.2.2 不同浓度6-BA、IAA、NAA、2,4-D对愈伤组织诱导的影响 | 第32-33页 |
3.2.3 不同浓度6-BA、IAA、KT对愈伤组织诱导的影响 | 第33-34页 |
3.2.4 种子不同处理方式对愈伤组织诱导的影响 | 第34-35页 |
3.2.5 不同灭菌时间对外植体的影响 | 第35页 |
3.2.6 不同胚乳处理方式和光照对无菌苗生长的影响 | 第35-36页 |
3.3 结论 | 第36-37页 |
3.4 讨论 | 第37-38页 |
3.4.1 不同外植体对重楼愈伤组织诱导的影响 | 第37页 |
3.4.2 激素对重楼愈伤组织诱导的影响 | 第37-38页 |
第四章 滇重楼毛状根诱导研究 | 第38-43页 |
4.1 材料与方法 | 第38-40页 |
4.1.1 实验材料与消毒处理 | 第38页 |
4.1.2 实验试剂与配制方法 | 第38-39页 |
4.1.3 菌种的活化方法 | 第39页 |
4.1.4 毛状根的诱导方法 | 第39页 |
4.1.5 毛状根诱导的单因素实验设计 | 第39-40页 |
4.2 结果与讨论 | 第40-42页 |
4.2.1 农杆菌生长曲线的测定结果 | 第40页 |
4.2.2 外植体选择对滇重楼毛状根诱导的影响 | 第40-41页 |
4.2.3 预培养、侵染对滇重楼毛状根诱导的影响 | 第41页 |
4.2.4 共培养对滇重楼毛状根诱导的影响 | 第41-42页 |
4.3 结论 | 第42-43页 |
第五章 结论 | 第43-44页 |
第六章 下一步研究方向 | 第44-45页 |
参考文献 | 第45-49页 |
致谢 | 第49-50页 |
附表1 缩略字 | 第50-51页 |
附表2 培养基配方 | 第51-52页 |