| 中文摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 一、引言 | 第9-11页 |
| 1.1 MΦ来源 | 第9页 |
| 1.2 MΦ极化和作用 | 第9-10页 |
| 1.3 流感病毒与MΦ | 第10页 |
| 1.4 胆碱能抗炎症通路 | 第10-11页 |
| 二、实验材料与方法 | 第11-23页 |
| 2.1 主要仪器 | 第11页 |
| 2.2 试剂列表 | 第11-12页 |
| 2.3 流毒病毒扩增及PFU测定 | 第12-14页 |
| 2.3.1 病毒鸡胚繁殖 | 第12-13页 |
| 2.3.2 病毒滴度测定 | 第13-14页 |
| 2.4 髓源MΦ诱导 | 第14-16页 |
| 2.4.1 实验材料 | 第14页 |
| 2.4.2 制备小鼠成纤维L929 细胞上清液 | 第14页 |
| 2.4.3 小鼠骨髓细胞的分离和提取 | 第14-15页 |
| 2.4.4 提取小鼠骨髓细胞时裂解红细胞 | 第15页 |
| 2.4.5 小鼠BMDM诱导培养 | 第15-16页 |
| 2.4.6 小鼠BMDM形态 | 第16页 |
| 2.5 小鼠BMDM纯度分析 | 第16-17页 |
| 2.6 GTS-21 刺激实验 | 第17-18页 |
| 2.7 WESTERN BLOTTING | 第18-19页 |
| 2.8 抽提BMDM全RNA | 第19页 |
| 2.9 CDNA合成 | 第19-20页 |
| 2.10 REAL-TIME PCR | 第20-21页 |
| 2.11 BMDM分泌TNF-Α 检测步骤 | 第21-22页 |
| 2.12 统计分析方法 | 第22页 |
| 2.13 动物实验伦理批准 | 第22-23页 |
| 三、实验结果 | 第23-36页 |
| 3.1 体外诱导骨髓来源MΦ的阳性率 | 第23-24页 |
| 3.2 PR8 感染下，激活 Α7 NACHR对BMDM极化标志分子的影响 | 第24-25页 |
| 3.3 BMDM感染PR8 条件下，激活 Α7 NACHR对IL-4 诱导ARG1及其转录因子的影响 | 第25-26页 |
| 3.4 感染PR8 条件下，激活 Α7 NACHR抑制BMDM分泌TNF-Α | 第26-27页 |
| 3.5 感染PR8 条件下，敲除 Α7 NACHR抑制IL-4 诱导BMDM的M2 极化 | 第27-28页 |
| 3.6 敲除 Α7 NACHR对感染PR8 小鼠肺匀浆中ARG1的影响 | 第28-29页 |
| 3.7 BMDM感染PR8 条件下，不同浓度的GTS-21 对IL-4 诱导ARG1的影响 | 第29-30页 |
| 3.8 BMDM感染PR8 条件下，激活 Α7 NACHR对不同浓度IL-4 诱导ARG1的影响 | 第30-31页 |
| 3.9 BMDM感染PR8 条件下，激活 Α7 NACHR抑制PR8 诱导的P-AKT | 第31-32页 |
| 3.10 敲除AKT1 对BMDM M2 极化的影响 | 第32-33页 |
| 3.11 小鼠感染PR8 条件下，敲除AKT1 对其肺匀浆和BALF细胞ARG1的影响 | 第33-36页 |
| 四、分析与讨论 | 第36-39页 |
| 五、参考文献 | 第39-41页 |
| 综述 | 第41-49页 |
| 参考文献 | 第45-49页 |
| 发表文章及个人简历 | 第49-50页 |
| 缩略词表 | 第50-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
