摘要 | 第6-8页 |
Abstract | 第8-10页 |
第一部分 桑螟种群性比统计及雌蛾性腺提取物的气相色谱-质谱分析 | 第17-43页 |
第1章 绪论 | 第17-25页 |
1.1 研究背景 | 第17-21页 |
1.1.1 昆虫信息素研究 | 第17页 |
1.1.2 信息素的产生以及调节 | 第17-18页 |
1.1.3 性信息素的提取及鉴定 | 第18-20页 |
1.1.4 昆虫信息素的应用 | 第20-21页 |
1.2 桑螟介绍及危害 | 第21-24页 |
1.3 桑螟当前的防治方法 | 第24页 |
1.4 本实验的主要研究内容 | 第24-25页 |
第2章 研究方法 | 第25-28页 |
2.1 实验昆虫饲养 | 第25页 |
2.2 实验仪器 | 第25页 |
2.3 桑螟雌雄鉴别 | 第25-26页 |
2.4 桑螟雌雄性别比例调查 | 第26-27页 |
2.4.1 野外采集桑螟性别统计 | 第26页 |
2.4.2 桑螟单蛾交配后代雌雄比例统计 | 第26页 |
2.4.3 桑螟孤雌生殖实验 | 第26-27页 |
2.5 桑螟雌蛾性腺提取物收集 | 第27页 |
2.6 气相色谱-质谱(GC-MS)检测 | 第27页 |
2.7 数据处理 | 第27-28页 |
第3章 实验结果 | 第28-41页 |
3.1 桑螟雌雄性比统计 | 第28-29页 |
3.1.1 野外和网棚采集桑螟性别统计 | 第28-29页 |
3.1.2 桑螟单独交配雌雄比例和孤雌生殖情况 | 第29页 |
3.2 桑螟性腺浸提物的GC—MS分析 | 第29-41页 |
3.2.1 桑螟性腺二氯甲烷萃取液GC-MS分析结果 | 第29-34页 |
3.2.2 桑螟性腺正己烷萃取液GC-MS分析结果 | 第34-41页 |
讨论 | 第41-43页 |
第二部分 低温诱导桑螟休眠的转录组和代谢组学分析 | 第43-79页 |
第4章 绪论 | 第43-45页 |
第5章 桑螟幼虫低温诱导转录组学分析 | 第45-67页 |
5.1 转录组与转录组学 | 第45-46页 |
5.2 试验流程 | 第46-49页 |
5.2.1 桑螟低温诱导方法 | 第46页 |
5.2.2 总RNA提取 | 第46页 |
5.2.3 mRNA纯化 | 第46-47页 |
5.2.4 mRNA质检 | 第47页 |
5.2.5 cDNA文库构建 | 第47页 |
5.2.6 文库质检 | 第47-48页 |
5.2.7 上机测序 | 第48-49页 |
5.2.8 生物信息学分析 | 第49页 |
5.3 转录组学分析结果 | 第49-52页 |
5.3.1 总RNA质量检测 | 第49-50页 |
5.3.2 桑螟幼虫转录组测序及拼装结果 | 第50-51页 |
5.3.3 测序质量 | 第51页 |
5.3.4 转录本拼接 | 第51-52页 |
5.4 基因功能注释 | 第52-58页 |
5.4.1 基因注释统计 | 第52-53页 |
5.4.2 KOG分析 | 第53-55页 |
5.4.3 GO分析 | 第55-56页 |
5.4.4 KEGG pathway分析 | 第56-58页 |
5.5 样本间unigene对比分析 | 第58-59页 |
5.6 基因差异表达分析 | 第59-65页 |
5.6.1 差异基因统计 | 第59-60页 |
5.6.2 差异基因分析 | 第60-65页 |
5.7 结果分析 | 第65-67页 |
第6章 桑螟幼虫低温诱导代谢组学分析 | 第67-79页 |
6.1 代谢组学研究 | 第67-68页 |
6.2 代谢组学研究流程 | 第68-70页 |
6.2.1 样本的采集 | 第68页 |
6.2.2 生物样本仪器检测 | 第68-69页 |
6.2.3 数据分析和代谢物生物学解释 | 第69-70页 |
6.3 实验材料 | 第70-71页 |
6.3.1 实验试剂 | 第70页 |
6.3.2 实验仪器 | 第70页 |
6.3.3 试验方法 | 第70-71页 |
6.4 试验结果 | 第71-77页 |
6.4.1 不同处理条件桑螟幼虫LC-MS离子色谱图 | 第71-72页 |
6.4.2 不同处理组的差异代谢物统计分析 | 第72-77页 |
6.5 结果分析 | 第77-79页 |
结论 | 第79-81页 |
参考文献 | 第81-85页 |
攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第85-87页 |
致谢 | 第87-88页 |
论文摘要 | 第88-93页 |