| 致谢 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 1 前言 | 第18-24页 |
| 1.1 黑木耳多糖的研究概况 | 第18-22页 |
| 1.1.1 多糖体外模拟水解的研究概况 | 第18-19页 |
| 1.1.2 氧化应激与T2DM | 第19-20页 |
| 1.1.3 天然糖类物质的降糖机制研究概况 | 第20-21页 |
| 1.1.4 黑木耳多糖降糖作用的研究 | 第21-22页 |
| 1.2 研究内容和意义 | 第22-24页 |
| 2 黑木耳品种的筛选 | 第24-40页 |
| 2.1 材料和仪器 | 第24-25页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第24页 |
| 2.1.2 试剂 | 第24-25页 |
| 2.1.3 仪器与设备 | 第25页 |
| 2.2 实验方法 | 第25-31页 |
| 2.2.1 黑木耳多糖的制备 | 第25页 |
| 2.2.2 多糖得率的测定 | 第25-27页 |
| 2.2.3 体外抗氧化指标测定 | 第27-28页 |
| 2.2.4 线虫体内抗氧化指标测定 | 第28-30页 |
| 2.2.5 对α-葡萄糖苷酶的抑制率测定 | 第30-31页 |
| 2.2.6 数据处理 | 第31页 |
| 2.3 结果分析与讨论 | 第31-39页 |
| 2.3.1 不同品种的黑木耳多糖得率 | 第31-32页 |
| 2.3.2 不同品种的黑木耳多糖体外抗氧化活性 | 第32-35页 |
| 2.3.3 对线虫寿命的影响 | 第35页 |
| 2.3.4 对线虫氧化应激抗性的影响 | 第35-37页 |
| 2.3.5 对线虫体内超氧化物歧化酶（SOD）和过氧化氢酶(CAT)酶活的影响 | 第37-38页 |
| 2.3.6 对线虫体内活性氧（ROS）的影响 | 第38页 |
| 2.3.7 对α-葡萄糖苷酶活性的抑制作用 | 第38-39页 |
| 2.4 本章小结 | 第39-40页 |
| 3 黑木耳多糖提取工艺的筛选 | 第40-50页 |
| 3.1 材料和仪器 | 第40-41页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第40页 |
| 3.1.2 试剂 | 第40页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第40-41页 |
| 3.2 实验方法 | 第41-42页 |
| 3.2.1 黑木耳多糖的提取工艺 | 第41页 |
| 3.2.2 多糖提取得率 | 第41页 |
| 3.2.3 体外抗氧化指标测定 | 第41页 |
| 3.2.4 线虫体内抗氧化指标测定 | 第41-42页 |
| 3.2.5 对α-葡萄糖苷酶的抑制率 | 第42页 |
| 3.2.6 数据处理 | 第42页 |
| 3.3 实验结果与分析 | 第42-49页 |
| 3.3.1 不同提取工艺的多糖得率 | 第42-43页 |
| 3.3.2 对黑木耳多糖体外抗氧化活性的影响 | 第43-45页 |
| 3.3.3 对黑木耳多糖在线虫体内抗氧化活性的影响 | 第45-48页 |
| 3.3.4 对黑木耳多糖抑制α-葡萄糖苷酶情况的影响 | 第48-49页 |
| 3.4 本章小结 | 第49-50页 |
| 4 黑木耳多糖体外消化降解及水解物的单糖组成测定 | 第50-59页 |
| 4.1 材料和仪器 | 第50页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第50页 |
| 4.1.2 试剂 | 第50页 |
| 4.1.3 实验仪器 | 第50页 |
| 4.2 实验方法 | 第50-52页 |
| 4.2.1 样品制备 | 第50-51页 |
| 4.2.2 人工胃肠道模拟 | 第51页 |
| 4.2.3 黑木耳体外水解物（AAOS）的单糖组成测定 | 第51-52页 |
| 4.3 结果分析与讨论 | 第52-57页 |
| 4.3.1 黑木耳多糖在体外模拟胃肠道中的降解情况 | 第52-57页 |
| 4.3.2 AAOS的单糖组成 | 第57页 |
| 4.4 本章小结 | 第57-59页 |
| 5 黑木耳多糖体外水解物的降糖作用研究 | 第59-69页 |
| 5.1 材料和仪器 | 第59-60页 |
| 5.1.1 实验材料 | 第59页 |
| 5.1.2 试剂 | 第59页 |
| 5.1.3 实验仪器 | 第59-60页 |
| 5.2 实验方法 | 第60-62页 |
| 5.2.1 样品的制备 | 第60页 |
| 5.2.2 STZ糖尿病大鼠的造模及实验大鼠的处理 | 第60页 |
| 5.2.3 葡萄糖耐量（GTT）试验 | 第60-61页 |
| 5.2.4 指标测定 | 第61页 |
| 5.2.5 高糖环境下线虫的寿命 | 第61-62页 |
| 5.2.6 数据处理 | 第62页 |
| 5.3 结果分析与讨论 | 第62-67页 |
| 5.3.1 大鼠的形态变化 | 第62-63页 |
| 5.3.2 GLP-1 分泌曲线及血糖值的变化 | 第63-64页 |
| 5.3.3 AAOS对STZ糖尿病大鼠的降糖作用 | 第64-67页 |
| 5.3.4 AAOS对高糖环境下的线虫寿命的影响 | 第67页 |
| 5.4 本章小结 | 第67-69页 |
| 6 黑木耳多糖体外水解物的分离纯化及光谱分析 | 第69-74页 |
| 6.1 材料和仪器 | 第69页 |
| 6.1.1 实验材料 | 第69页 |
| 6.1.2 试剂 | 第69页 |
| 6.1.3 实验仪器 | 第69页 |
| 6.2 实验方法 | 第69-71页 |
| 6.2.1 样品的制备 | 第69-70页 |
| 6.2.2 分离纯化 | 第70页 |
| 6.2.3 紫外可见光谱扫描 | 第70页 |
| 6.2.4 高效液相色谱法测定分子量 | 第70-71页 |
| 6.2.5 核磁共振测定 | 第71页 |
| 6.3 结果分析与讨论 | 第71-74页 |
| 6.3.1 AAOS的分离纯化 | 第71-72页 |
| 6.3.2 紫外可见光谱分析 | 第72页 |
| 6.3.3 分子量 | 第72-73页 |
| 6.3.4 核磁共振碳谱分析 | 第73-74页 |
| 6.4 本章小结 | 第74页 |
| 展望 | 第74-76页 |
| 参考文献 | 第76-81页 |
| 附录A AAOS1核磁共振碳谱 | 第81-82页 |
| 附录B AAOS2核磁共振碳谱 | 第82-83页 |
| 作者简历 | 第83页 |
