| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-12页 |
| 缩略语 | 第13-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-42页 |
| 1 水稻花发育研究概况 | 第14-21页 |
| 1.1 水稻的花结构与开花 | 第14-17页 |
| 1.2 水稻生殖分生组织的发育 | 第17-18页 |
| 1.3 水稻花序分生组织的发育 | 第18-20页 |
| 1.4 水稻小穗分生组织的发育 | 第20-21页 |
| 2 水稻花发育的分子机制 | 第21-30页 |
| 2.1 双子叶植物花发育的"ABC"模型 | 第21-23页 |
| 2.2 水稻花发育的"ABCDE"模型 | 第23-25页 |
| 2.3 水稻花发育与ABCDE花器官特征基因 | 第25-30页 |
| 2.3.1 内外稃的发育 | 第25-27页 |
| 2.3.2 内部花器官的发育 | 第27-30页 |
| 3 表观遗传的调控机制 | 第30-33页 |
| 3.1 表观遗传学的定义和内容 | 第30页 |
| 3.2 DNA甲基化 | 第30-31页 |
| 3.3 组蛋白修饰 | 第31-33页 |
| 3.3.1 组蛋白乙酰化和去乙酰化 | 第32页 |
| 3.3.2 组蛋白甲基化与去甲基化 | 第32页 |
| 3.3.3 组蛋白泛素化与去泛素化 | 第32-33页 |
| 4 PcG蛋白介导的基因沉默与植物发育 | 第33-40页 |
| 4.1 PcG蛋白复合体的结构组成和分类 | 第33-36页 |
| 4.2 H3K27me3修饰在植物基因组上的建立、维持和识别 | 第36-37页 |
| 4.3 PRC2在植物细胞命运转换过程中的作用 | 第37-39页 |
| 4.4 水稻中PcG蛋白的研究进展 | 第39-40页 |
| 5 本研究的目的和意义 | 第40-42页 |
| 第二章 水稻dfo1突变体的表型观察与遗传分析 | 第42-52页 |
| 1 材料和方法 | 第42-44页 |
| 1.1 实验材料与田间种植 | 第42-43页 |
| 1.2 dfo1-1农艺性状观察 | 第43页 |
| 1.3 dfo1-1花器官形态观察 | 第43-44页 |
| 1.4 dfo1-1扫描电镜(SEM)观察 | 第44页 |
| 2 结果与分析 | 第44-50页 |
| 2.1 dfo1表型分析 | 第44-45页 |
| 2.2 dfo1-1小穗表现出内稃发育缺陷 | 第45-47页 |
| 2.3 dfo1-1小花内部花器官形态建成受阻 | 第47-49页 |
| 2.4 dfo1-1花序原基SEM观察 | 第49-50页 |
| 2.5 dfo1-1的遗传分析 | 第50页 |
| 3 讨论 | 第50-52页 |
| 3.1 dfo1是一个新的花器官突变体 | 第50页 |
| 3.2 dfo1影响水稻花器官的形态建成 | 第50-52页 |
| 第三章 水稻花器官突变基因DFO1的精细定位和转基因互补验证 | 第52-64页 |
| 1 材料与方法 | 第52-57页 |
| 1.1 实验材料与田间种植 | 第52页 |
| 1.2 DNA提取 | 第52-53页 |
| 1.3 分子标记检测 | 第53-54页 |
| 1.4 分子标记开发 | 第54页 |
| 1.5 基因定位 | 第54-55页 |
| 1.6 候选基因预测与测序 | 第55页 |
| 1.7 RNA提取与PCR分析 | 第55-56页 |
| 1.8 转基因互补载体的构建 | 第56-57页 |
| 1.9 农杆菌转化 | 第57页 |
| 1.10 转基因阳性植株的鉴定 | 第57页 |
| 2 结果与分析 | 第57-61页 |
| 2.1 基因的初定位与精细定位 | 第57-58页 |
| 2.2 候选基因分析 | 第58-59页 |
| 2.3 候选基因的测序与dCAPS验证 | 第59-61页 |
| 2.4 转基因互补验证 | 第61页 |
| 3 讨论 | 第61-64页 |
| 3.1 DFO1的提前终止导致dfo1的突变表型 | 第61-62页 |
| 3.2 DFO1编码一个拟南芥EMBRONIC FLOWER1(EMF1)的同源蛋白(OsEMF1) | 第62-64页 |
| 第四章 水稻DFO1基因的表达与功能分析 | 第64-84页 |
| 1 材料与方法 | 第64-70页 |
| 1.1 Real-time PCR分析 | 第64页 |
| 1.2 GUS活性的组织化学染色分析 | 第64-65页 |
| 1.3 同源性分析 | 第65页 |
| 1.4 DFO1的亚细胞定位 | 第65页 |
| 1.5 Yeast杂交分析 | 第65-66页 |
| 1.6 染色质免疫共沉淀(Chip-H3K27me3) | 第66页 |
| 1.7 体外蛋白的原核表达 | 第66-67页 |
| 1.8 Pull-down(体外)分析 | 第67-68页 |
| 1.9 荧光双分子互补(BiFC) | 第68页 |
| 1.10 mRNA原位杂交 | 第68-70页 |
| 2 结果与分析 | 第70-81页 |
| 2.1 DFO1的表达模式分析 | 第70-71页 |
| 2.2 DFO1基因结构与同源分析 | 第71-73页 |
| 2.3 DFO1基因编码一个核蛋白 | 第73-74页 |
| 2.4 DFO1蛋白全长及截断片段的转录活性测定 | 第74-75页 |
| 2.5 DFO1与水稻花器官发育途径相关 | 第75-77页 |
| 2.6 DFO1负调控OsMADS58 | 第77-78页 |
| 2.7 DFO1与水稻PcG类蛋白互作 | 第78-79页 |
| 2.8 DFO1基因突变改变对OsMADS58染色质的H3K27me3修饰 | 第79-81页 |
| 3 讨论 | 第81-84页 |
| 3.1 DFO1负调控水稻花器官C-类基因的表达 | 第81-82页 |
| 3.2 DFO1参与PcG蛋白复合体PRC2介导的转录抑制 | 第82页 |
| 3.3 DFO1与EMF1功能的异同 | 第82-84页 |
| 第五章 全文讨论与结论 | 第84-89页 |
| 1 讨论 | 第84-86页 |
| 1.1 水稻花器官的mrp是拟南芥萼片的同源物 | 第84-85页 |
| 1.2 DFO1调控水稻花器官的形态建成 | 第85页 |
| 1.3 DFO1在水稻花发育过程中的作用 | 第85-86页 |
| 2 结论 | 第86-88页 |
| 2.1 dfo1的表型是由DFO1的突变导致 | 第86页 |
| 2.2 DFO1编码一个核蛋白 | 第86-87页 |
| 2.3 DFO1负调控水稻花器官特征C-类基因 | 第87页 |
| 2.4 DFO1参与PcG介导的基因转录沉默 | 第87-88页 |
| 3 创新性 | 第88-89页 |
| 参考文献 | 第89-108页 |
| 附录 | 第108-122页 |
| 在读期间发表论文 | 第122-124页 |
| 致谢 | 第124页 |
