摘要 | 第1-8页 |
Abstract | 第8-9页 |
缩略语表(Abbreviation) | 第9-10页 |
1 文献综述 | 第10-26页 |
·乙型脑炎简介 | 第10页 |
·乙型脑炎的流行病学 | 第10-12页 |
·乙型脑炎的分布与流行 | 第10-11页 |
·乙型脑炎的传播模式 | 第11-12页 |
·乙型脑炎病毒的病原学特征 | 第12-16页 |
·乙型脑炎病毒的形态与结构 | 第12-13页 |
·乙型脑炎病毒的理化性质 | 第13-14页 |
·乙型脑炎病毒的复制 | 第14-15页 |
·乙型脑炎病毒的致病过程 | 第15-16页 |
·乙型脑炎的临床症状与危害 | 第16-17页 |
·乙型脑炎的诊断与防控 | 第17-18页 |
·乙型脑炎的诊断 | 第17页 |
·乙型脑炎的防控 | 第17-18页 |
·JEV相关的免疫抑制机制简述 | 第18-26页 |
·DC介导的免疫抑制 | 第18-19页 |
·MDSCs介导的免疫抑制 | 第19-21页 |
·抑制性分子介导的免疫抑制 | 第21-25页 |
·IL-10介导的免疫抑制 | 第25-26页 |
2 目的与意义 | 第26-27页 |
3 实验材料与方法 | 第27-38页 |
·实验材料 | 第27-30页 |
·病毒、细胞 | 第27页 |
·主要药品和试剂 | 第27-28页 |
·培养基及其配制 | 第28页 |
·溶液及其配制 | 第28-29页 |
·实验动物 | 第29页 |
·实验所用手术器械 | 第29页 |
·重要仪器及设备 | 第29-30页 |
·实验方法 | 第30-38页 |
·细胞的复苏、培养及传代 | 第30页 |
·JEV-P3株的扩增与滴定 | 第30-32页 |
·bmDCs细胞的制备 | 第32页 |
·脾脏CD4~+ T淋巴细胞、CD8~+ T淋巴细胞的流式分选 | 第32-33页 |
·DC-T淋巴细胞共培养 | 第33-34页 |
·JEV-P3感染BALB/c小鼠及PD1/- 小鼠 | 第34-35页 |
·小鼠血液单细胞悬液的制备 | 第35页 |
·小鼠脾脏单细胞悬液的制备 | 第35-36页 |
·细胞表面染色和胞内染色 | 第36-37页 |
·手术器械消毒 | 第37页 |
·实验动物及废物无害化处理 | 第37页 |
·流式细胞术数据分析 | 第37页 |
·数据统计分析 | 第37-38页 |
4 结果与分析 | 第38-59页 |
·空斑试验测定JEV-P3株病毒滴度 | 第38页 |
·小鼠骨髓来源树突状细胞的培养 | 第38-39页 |
·DC-T细胞共培养 | 第39-43页 |
·CD4~+ CD25~+ T细胞的变化 | 第39-41页 |
·bmDCs细胞表面CD86、CD80分子变化 | 第41-43页 |
·BALB/C小鼠和PD1/- 小鼠感染模型的建立 | 第43-46页 |
·JEV-P3感染PD1/- 小鼠及BALB/C小鼠实验 | 第46-59页 |
·CD4~+ T细胞及其表面抑制性分子CTLA-4 的变化 | 第47-49页 |
·DC细胞表面分子CD80及CD86的变化 | 第49-51页 |
·DC细胞表面分子CD274及CD273的变化 | 第51-53页 |
·MDSCs及相关分子的变化 | 第53-55页 |
·细胞因子IL-10的变化 | 第55-57页 |
·细胞因子IL-21的变化 | 第57-59页 |
5 讨论 | 第59-63页 |
·DC表面共刺激分子的变化 | 第60-61页 |
·MDSCS的变化 | 第61页 |
·细胞因子IL-10的变化 | 第61-62页 |
·JEV-P3感染小鼠后相关免疫调节 | 第62-63页 |
结论 | 第63-64页 |
参考文献 | 第64-79页 |
致谢 | 第79-80页 |