| 摘要 | 第1-3页 |
| Abstract | 第3-9页 |
| 第一章 绪论 | 第9-27页 |
| ·阿魏菇的研究概况 | 第9-10页 |
| ·食用菌液体深层发酵技术的研究概况 | 第10-15页 |
| ·食用菌深层发酵研究概况及特点 | 第10-12页 |
| ·食用菌深层发酵工艺参数 | 第12-14页 |
| ·食用菌液体发酵应用概况 | 第14-15页 |
| ·食用菌多糖的研究概述 | 第15-24页 |
| ·食用菌多糖的制备 | 第16页 |
| ·食用菌多糖的分离纯化及纯度鉴定 | 第16-17页 |
| ·食用菌多糖含量的定量测定 | 第17-18页 |
| ·食药用菌多糖的结构分析 | 第18-20页 |
| ·真菌多糖的结构与生物活性的关系 | 第20-24页 |
| ·食用菌多糖的应用研究概况 | 第24-25页 |
| ·功能食品的研究 | 第24页 |
| ·食用菌多糖功能食品添加剂的开发范围 | 第24-25页 |
| ·食用菌功能食品的加工形式 | 第25页 |
| ·本试验的选题依据、目的及意义 | 第25-27页 |
| 第二章 阿魏菇深层发酵条件的优化 | 第27-45页 |
| 1 材料和方法 | 第27-31页 |
| ·材料 | 第27页 |
| ·液体菌种制备 | 第27页 |
| ·测定方法 | 第27-28页 |
| ·液体菌种营养条件的优化 | 第28-30页 |
| ·不同碳源对阿魏菇菌丝体生物量及胞内多糖的影响试验 | 第28-29页 |
| ·不同氮源对阿魏菇菌丝体生物量及胞内多糖的影响试验 | 第29页 |
| ·无机盐对阿魏菇菌丝体生物量及胞内多糖的影响试验 | 第29页 |
| ·正交法筛选阿魏菇液体发酵培养基 | 第29-30页 |
| ·液体菌种发酵条件的优化 | 第30-31页 |
| ·初始 PH 对阿魏菇菌丝体生物量及胞内多糖的影响试验 | 第30页 |
| ·不同装液量对阿魏菇菌丝体生物量及胞内多糖的影响试验 | 第30页 |
| ·液体菌种培养的动态研究试验 | 第30页 |
| ·液体发酵条件优化正交表 | 第30-31页 |
| ·发酵终点的简便检测方法 | 第31页 |
| 2 结果与分析 | 第31-45页 |
| ·标准曲线绘制 | 第31-33页 |
| ·多糖测定苯酚-硫酸法 | 第31-32页 |
| ·考马斯亮蓝结合法测定蛋白质浓度 | 第32-33页 |
| ·筛选出诱变菌株与原始菌株在平板的长势比较 | 第33-34页 |
| ·液体菌种营养条件的优化 | 第34-37页 |
| ·不同碳源对阿魏菇菌丝体生物量及胞内多糖的影响试验 | 第34页 |
| ·不同氮源对阿魏菇菌丝体生物量及胞内多糖的影响 | 第34-35页 |
| ·无机盐对阿魏菇菌丝体生物量及发酵液多糖的影响 | 第35页 |
| ·正交法筛选阿魏菇液体发酵培养基 | 第35-37页 |
| ·液体发酵条件影响 | 第37-39页 |
| ·初始 PH 对阿魏菇菌丝体生物量及发酵液多糖的影响试验 | 第37-38页 |
| ·不同装液量对阿魏菇菌丝体生物量的影响 | 第38页 |
| ·液体菌种培养的动态研究试验 | 第38-39页 |
| ·发酵终点的判断 | 第39-41页 |
| ·液体发酵培养条件正交表 | 第41-42页 |
| ·5L 发酵罐的扩大培养 | 第42-45页 |
| 第三章 阿魏菇多糖提取及其纯化 | 第45-65页 |
| 1 原料、试剂材料及仪器 | 第45-47页 |
| ·原料和试剂材料 | 第45页 |
| ·实验方法 | 第45-46页 |
| ·阿魏菇干菌丝体胞内多糖提取流程 | 第45页 |
| ·干菌丝体粗多糖提取 | 第45页 |
| ·阿魏菇鲜菌丝体胞内粗多糖提取 | 第45页 |
| ·不同提取多糖方法的效率比较 | 第45-46页 |
| ·阿魏菇菌渣利用饱和CA(OH)2浸提正交实验 | 第46页 |
| ·菌丝浸提次数对多糖产量影响 | 第46页 |
| ·多糖的纯化 | 第46-47页 |
| ·去杂质后脱蛋白 | 第46页 |
| ·去蛋白次数比较 | 第46-47页 |
| ·乙醇浓度对多糖得率的影响 | 第47页 |
| ·醇析时间对多糖得率的影响 | 第47页 |
| ·醇析，盐析和醇盐混合法对多糖析出量的比较 | 第47页 |
| ·H202脱色时间比较 | 第47页 |
| 2 结果 | 第47-65页 |
| ·碱提、酸提、热水浸提正交设计 | 第47-51页 |
| ·干菌丝碱提正交结果 | 第47-48页 |
| ·干菌丝酸提正交结果 | 第48-50页 |
| ·干菌丝热水浸提正交结果 | 第50-51页 |
| ·阿魏菇鲜菌丝胞内多糖在不同提取条件下的提取结果及讨论 | 第51-59页 |
| ·酸提正交结果 | 第51-52页 |
| ·碱提正交结果 | 第52-53页 |
| ·超声波正交提取结果 | 第53-54页 |
| ·匀浆法正交提取结果 | 第54-55页 |
| ·冰融法正交结果 | 第55-56页 |
| ·热水浸提正交结果 | 第56-57页 |
| ·不同提取多糖方法的效率比较 | 第57页 |
| ·阿魏菇菌渣利用饱和 CA(OH)2 浸提正交结果 | 第57-58页 |
| ·菌丝浸提次数对多糖提取的影响 | 第58-59页 |
| ·脱蛋白 | 第59-65页 |
| ·将三种脱蛋白方法所得结果比较 | 第59-60页 |
| ·去蛋白次数比较 | 第60页 |
| ·乙醇浓度对多糖得率的影响 | 第60-61页 |
| ·醇析时间对多糖得率的影响 | 第61页 |
| ·醇析，盐析和醇盐混合法对多糖析出量的比较 | 第61-62页 |
| ·H202脱色时间比较 | 第62-63页 |
| ·多糖DEAE-52 柱分离 | 第63-65页 |
| 第四章 阿魏菇多糖图谱分析 | 第65-70页 |
| 1 材料和仪器 | 第65页 |
| ·材料经过纯化阿魏菇多糖 | 第65页 |
| ·试剂 | 第65页 |
| ·仪器 | 第65页 |
| ·实验方法 | 第65页 |
| ·阿魏菇胞内多糖定量分析吸收光谱扫描 | 第65页 |
| ·阿魏菇胞内多糖提取液吸收光谱扫描 | 第65页 |
| ·阿魏菇胞内多糖红外光谱扫描 | 第65页 |
| ·高效液相测量阿魏菇胞内多糖分子量 | 第65页 |
| 2 实验结果 | 第65-70页 |
| ·用苯酚-硫酸法测定多糖含量的吸收光谱扫描 | 第65-66页 |
| ·多糖料液吸收光谱扫描 | 第66-67页 |
| ·多糖红外光谱扫描 | 第67页 |
| ·高效液相测量阿魏菇胞内多糖分子量 | 第67-70页 |
| 第五章 阿魏菇功能饮料开发 | 第70-76页 |
| 1 实验材料和仪器 | 第70-72页 |
| ·实验材料 | 第70页 |
| ·主要仪器 | 第70页 |
| ·实验方法 | 第70-71页 |
| ·阿魏菇功能饮料生产工艺流程 | 第70-71页 |
| ·提取 | 第71页 |
| ·调配 | 第71页 |
| ·高压均质 | 第71页 |
| ·脱气 | 第71页 |
| ·灭菌及灌装 | 第71页 |
| ·食品中细菌总数的测定方法 | 第71-72页 |
| 2 结果与讨论 | 第72-76页 |
| ·阿魏菇功能饮料 | 第72-74页 |
| ·阿魏菇低糖功能饮料 | 第74-76页 |
| 结论 | 第76-78页 |
| 参考文献 | 第78-84页 |
| 硕士期间发表论文清单 | 第84-85页 |
| 致谢 | 第85-87页 |
