摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-9页 |
引言 | 第9-10页 |
1 文献综述 | 第10-21页 |
·胰岛素样生长因子及其研究现状 | 第10页 |
·胰岛素样生长因子的组成及生理作用 | 第10-14页 |
·IGF-1和IGF-2 | 第11页 |
·IGF-1和IGF-2/M-6-p(6-磷酸甘露醇)受体 | 第11页 |
·胰岛素样生长因子结合蛋白(IGFBPs) | 第11-12页 |
·IGF的生物学作用 | 第12-13页 |
·口饲IGF-1对动物胃肠道功能的影响 | 第13-14页 |
·杆状病毒的研究进展 | 第14-19页 |
·杆状病毒的简介 | 第14-15页 |
·杆状病毒基因的表达调控 | 第15-16页 |
·杆状病毒表达载体研究进展 | 第16页 |
·杆状病毒表达系统的建立及其原理 | 第16-17页 |
·晚期基因启动子构建转移载体 | 第17-18页 |
·早期启动子(IE)的研究进展 | 第18页 |
·早期启动子载体的发展 | 第18-19页 |
·柞蚕NPV载体表达系统的特点 | 第19页 |
·本研究的目的及意义 | 第19-21页 |
2 柞蚕核型多角体病毒IE-1基因启动子的克隆与分析 | 第21-32页 |
·实验材料和主要仪器 | 第21-22页 |
·病毒、细胞、菌种和质粒 | 第21页 |
·主要试剂 | 第21页 |
·主要仪器 | 第21-22页 |
·实验方法 | 第22-25页 |
·柞蚕核型多角体病毒DNA的提取 | 第22页 |
·引物的设计 | 第22页 |
·柞蚕IE-1基因启动子的克隆 | 第22-23页 |
·IE-1启动子的测序分析 | 第23页 |
·表达载体的构建 | 第23-24页 |
·转染用质粒的提取与精制 | 第24-25页 |
·转染Hela细胞 | 第25页 |
·实验结果与分析 | 第25-31页 |
·提取的病毒基因组 | 第25-26页 |
·PCR及连接pMD18-T克隆载体结果 | 第26-27页 |
·启动子的序列分析 | 第27-28页 |
·与其它IE-1基因转录起始区域的序列比对分析 | 第28-29页 |
·表达载体的构建 | 第29-30页 |
·重组质粒IE-1/pGFP-N2在Hela细胞中的表达 | 第30-31页 |
·讨论 | 第31页 |
·小结 | 第31-32页 |
3 带有IGF-1和GFP的杆状病毒双启动子转移载体的构建 | 第32-48页 |
·实验材料和主要仪器 | 第32-33页 |
·酶和试剂 | 第32页 |
·载体和菌株 | 第32页 |
·主要实验器材 | 第32-33页 |
·实验方法 | 第33-35页 |
·质粒DNA的提取 | 第33页 |
·限制性酶切反应 | 第33页 |
·从反应液中回收PCR产物 | 第33页 |
·从普通琼脂糖凝胶中回收DNA片段 | 第33-34页 |
·线性DNA片段末端的去磷酸化 | 第34页 |
·DNA的连接 | 第34页 |
·感受态细胞的制备 | 第34页 |
·质粒的转化 | 第34页 |
·引物设计 | 第34-35页 |
·载体的构建策略 | 第35-37页 |
·SV40 polyA克隆载体的构建 | 第35页 |
·单拷贝IGF-1克隆载体的构建 | 第35-36页 |
·用于多拷贝的IGF-1克隆载体构建 | 第36页 |
·多拷贝IGF-1基因克隆载体的构建 | 第36页 |
·P_(ie)-GFP克隆载体的构建 | 第36-37页 |
·双启动子转移载体的构建 | 第37页 |
·实验结果与分析 | 第37-46页 |
·SV40 polyA克隆载体的构建 | 第37-38页 |
·单拷贝IGF-1克隆载体的构建 | 第38-40页 |
·用于多拷贝的IGF-1克隆载体构建 | 第40-41页 |
·多拷贝IGF-1基因克隆载体的构建 | 第41-42页 |
·P_(ie)-GFP克隆载体的构建 | 第42-44页 |
·双启动子转移载体的构建 | 第44-46页 |
·讨论 | 第46-47页 |
·小结 | 第47-48页 |
4 结论 | 第48-53页 |
·主要结论 | 第48页 |
·进一步需要开展的工作 | 第48页 |
·创新 | 第48-49页 |
·展望 | 第49-53页 |
附录 DNA Marker | 第53-54页 |
攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第54-55页 |
致谢 | 第55-56页 |