| 摘要 | 第1-3页 |
| SUMMARY | 第3-5页 |
| 插图及表格清单 | 第5-7页 |
| 缩略语 | 第7-11页 |
| 前言 | 第11-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-26页 |
| ·苜蓿假盘菌生物学特性 | 第13-15页 |
| ·苜蓿假盘菌寄主范围及感病症状 | 第13页 |
| ·病原菌外部形态 | 第13-14页 |
| ·苜蓿假盘菌的分离培养 | 第14页 |
| ·温度和PH 对假盘菌子囊孢子和芽管萌发的影响 | 第14页 |
| ·苜蓿假盘菌不同菌株致病性测定 | 第14-15页 |
| ·苜蓿假盘菌侵染和传播方式 | 第15-17页 |
| ·侵染过程 | 第15页 |
| ·传播方式 | 第15页 |
| ·苜蓿假盘菌侵染寄主的条件 | 第15-17页 |
| ·苜蓿假盘菌侵染寄主的危害 | 第17-19页 |
| ·苜蓿褐斑病抗性筛选的研究 | 第19-20页 |
| ·ISSR 分子标记技术原理及其应用 | 第20-25页 |
| ·分子标记的概念和原理 | 第20-21页 |
| ·ISSR 分子标记技术原理及特点 | 第21-22页 |
| ·ISSR 分子标记技术的应用 | 第22-25页 |
| ·DNA 指纹图谱的建立 | 第22页 |
| ·遗传图谱的构建和基因定位 | 第22-23页 |
| ·亲缘关系和遗传多样性研究 | 第23-24页 |
| ·分子标记辅助育种的潜力 | 第24-25页 |
| ·本试验的主旨 | 第25-26页 |
| 第二章 不同地区苜蓿假盘菌培养形状的观察 | 第26-40页 |
| ·供试材料 | 第26-30页 |
| ·供试菌株及来源 | 第26页 |
| ·试验仪器和药品 | 第26-27页 |
| ·各种培养基及溶液的配方 | 第27-28页 |
| ·假盘菌的分离纯化 | 第28-29页 |
| ·离心稀释法 | 第28-29页 |
| ·叶片弹射法 | 第29页 |
| ·水琼脂观察孢子的弹射情况 | 第29页 |
| ·菌落形态观察 | 第29-30页 |
| ·病原菌形态观察 | 第30页 |
| ·适宜培养基的筛选 | 第30页 |
| ·数据分析方法 | 第30页 |
| ·结果与分析 | 第30-38页 |
| ·菌落纯化结果 | 第30-31页 |
| ·离心稀释法 | 第30页 |
| ·叶片弹射法 | 第30-31页 |
| ·菌落形态的观察结果 | 第31页 |
| ·病原菌形态观察结果 | 第31-33页 |
| ·培养性状之间的方差分析和相关性分析 | 第33-34页 |
| ·培养基筛选结果 | 第34-38页 |
| ·讨论 | 第38-40页 |
| ·各菌株培养性状之间的差异 | 第38页 |
| ·适宜培养基的筛选 | 第38-40页 |
| 第三章 不同地区苜蓿假盘菌ISSR 分子指纹分析 | 第40-65页 |
| ·材料和方法 | 第40-48页 |
| ·供试材料 | 第40-42页 |
| ·试验仪器和药品 | 第40-41页 |
| ·溶液配制 | 第41-42页 |
| ·试验方法 | 第42-44页 |
| ·DNA 的提取 | 第42-43页 |
| ·SDS-CTAB 法 | 第42页 |
| ·SDS法 | 第42-43页 |
| ·氯化苄法 | 第43页 |
| ·基因组DNA 的检测 | 第43-44页 |
| ·紫外分光光度检测法 | 第43页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳检测法 | 第43-44页 |
| ·ISSR 扩增反应检测 | 第44页 |
| ·氯化苄法提取DNA 影响因素研究 | 第44页 |
| ·PCR 扩增反应体系的优化 | 第44-48页 |
| ·最佳DNA 模板用量的确定 | 第44-45页 |
| ·最佳TAQDNA 聚合酶用量的确定 | 第45页 |
| ·最佳MG~(2+)用量的确定 | 第45-46页 |
| ·最佳DNTP 浓度的确定 | 第46页 |
| ·最佳引物浓度的确定 | 第46页 |
| ·ISSR 引物的筛选和最佳退火温度的确定 | 第46-47页 |
| ·MGCL_2 与DNTP 相互作用 | 第47页 |
| ·ISSR 扩增产物的电泳检测 | 第47-48页 |
| ·琼脂糖凝胶的制备 | 第47-48页 |
| ·DNA 的ISSR 扩增结果检测 | 第48页 |
| ·电泳结果的计算公式和统计分析方法 | 第48页 |
| ·结果与分析 | 第48-62页 |
| ·DNA 提取质量的检测 | 第48-50页 |
| ·紫外吸收检测结果 | 第48-49页 |
| ·琼脂糖凝胶检测结果 | 第49页 |
| ·ISSR 扩增检测结果 | 第49-50页 |
| ·氯化苄法提取DNA 影响因素分析 | 第50-52页 |
| ·不同PH 对氯化苄法提取DNA 的影响 | 第50页 |
| ·液氮处理对氯化苄法提取结果的影响 | 第50页 |
| ·蛋白酶K 对氯化苄法DNA 提取的影响 | 第50-52页 |
| ·ISSR 分析最佳体系的建立 | 第52-57页 |
| ·模板DNA 浓度对ISSR 扩增结果的影响 | 第52-53页 |
| ·TAQ DNA 聚合酶浓度对ISSR 扩增结果的影响 | 第53-54页 |
| ·不同MG~(2+)浓度时的试验结果 | 第54页 |
| ·不同DNTP 浓度对PCR 结果的影响 | 第54页 |
| ·不同引物浓度对PCR 结果的影响 | 第54页 |
| ·退火温度对扩增结果的影响 | 第54页 |
| ·MGCL_2 与DNTP 交互作用及对PCR 反应的影响 | 第54-56页 |
| ·ISSR 扩增反应体系及反应程序 | 第56-57页 |
| ·苜蓿假盘菌ISSR 的分析 | 第57-62页 |
| ·ISSR 引物筛选及对苜蓿假盘菌的指纹扩增结果 | 第57-60页 |
| ·6 个苜蓿假盘菌基于ISSR 的亲缘关系分析 | 第60-61页 |
| ·苜蓿假盘菌ISSR 多态性与地理来源和培养性状之间相关性 | 第61-62页 |
| ·讨论 | 第62-65页 |
| ·苜蓿假盘菌基因组DNA 的提取 | 第62-63页 |
| ·ISSR 的稳定性和可行性 | 第63-64页 |
| ·ISSR 多态性与地理来源和培养性状的相关性 | 第64-65页 |
| 全文结论 | 第65-66页 |
| 创新点 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-75页 |
| 导师简介 | 第75-76页 |
| 作者简介 | 第76-77页 |
