| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 目录 | 第6-8页 |
| 缩略语 | 第8-9页 |
| ·引言 | 第9-16页 |
| ·溶瘤腺病毒在肿瘤基因治疗中的研究进展 | 第9-12页 |
| ·溶瘤腺病毒 | 第9-10页 |
| ·提高溶瘤腺病毒靶向性的策略 | 第10-12页 |
| ·CIK在肿瘤基因治疗中的研究进展 | 第12-15页 |
| ·CIK细胞作用机制 | 第13-15页 |
| ·实验方案设计 | 第15-16页 |
| ·实验目的和意义 | 第15-16页 |
| ·研究内容 | 第16页 |
| ·实验材料 | 第16-19页 |
| ·实验材料 | 第16-19页 |
| ·菌株及质粒 | 第16页 |
| ·工具酶及试剂 | 第16页 |
| ·腺病毒 | 第16-17页 |
| ·细胞株 | 第17页 |
| ·实验动物 | 第17页 |
| ·实验所需试剂 | 第17页 |
| ·实验所需要的仪器和设备 | 第17-18页 |
| ·主要溶液的配制 | 第18-19页 |
| ·引物设计与合成 | 第19页 |
| ·实验方法 | 第19-30页 |
| ·分子克隆基本方法 | 第19-23页 |
| ·质粒DNA的制备 | 第19-21页 |
| ·从琼脂糖凝胶中回收DNA | 第21页 |
| ·酶切与连接 | 第21-22页 |
| ·大肠杆菌感受态的制备及转化 | 第22-23页 |
| ·AdCN205-hIL12-p40-LΔAp35腺病毒载体重组过程 | 第23-26页 |
| ·pCZ203-hIL12-p40-LΔp35的构建 | 第23页 |
| ·pCZ204-hIL12-p40-LΔp35的构建 | 第23-24页 |
| ·在细菌BJ5183中重组得到pCZ205-hIL12-p40-LΔp35 | 第24-26页 |
| ·病毒的扩增纯化及滴度测定 | 第26-27页 |
| ·子代病毒复制能力 | 第27页 |
| ·MTT检测细胞的存活 | 第27-28页 |
| ·ELISA测定病毒AdCN205-hIL-12表达外源基因 | 第28-29页 |
| ·AdCN205-GFP荧光表达 | 第29页 |
| ·荧光化学发光检测细胞存活光表达 | 第29页 |
| ·SCID鼠Huh7肝癌移植瘤模型的建立及分组治疗 | 第29-30页 |
| ·ELISA检测组织匀浆中hIL-12的含量 | 第30页 |
| ·实验结果 | 第30-41页 |
| ·质粒构建 | 第30-31页 |
| ·pCZ203-hIL.12-p40-LΔp35的构建及鉴定结果 | 第30页 |
| ·pCZ204-hIL12-p40-LΔp35的构建及鉴定结果 | 第30-31页 |
| ·重组得到pCZ205-hIL12-p40-LΔp35及其鉴定结果 | 第31页 |
| ·病毒包装、扩增 | 第31-32页 |
| ·病毒包装鉴定结果 | 第32-33页 |
| ·病毒滴度的测定 | 第33页 |
| ·AdCN205-hIL-12在体外能够选择性地在肿瘤细胞中复制 | 第33-34页 |
| ·外源基因选择性地在肿瘤细胞中高量表达 | 第34-36页 |
| ·AdCN205-hIL-12具有选择性杀死肿瘤细胞的能力 | 第36-37页 |
| ·AdCN205-hIL-12联合CIK细胞发挥协同作用杀伤癌细胞 | 第37-38页 |
| ·AdCN205-hIL-12明显抑制荷瘤小鼠肿瘤生长 | 第38-41页 |
| 结论 | 第41-44页 |
| 致谢 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-48页 |
| 硕士阶段发表论文(第一作者) | 第48页 |
