| 摘要 | 第1-9页 |
| ABSTRACT | 第9-13页 |
| 第一章 前言 | 第13-20页 |
| ·海洋胶原蛋白和胶原蛋白肽的结构 | 第13-14页 |
| ·胶原蛋白肽的制备 | 第14页 |
| ·海洋胶原蛋白肽的生物活性 | 第14-16页 |
| ·抑制血管紧张素转化酶活性 | 第15页 |
| ·抗氧化活性 | 第15-16页 |
| ·抑制酪氨酸酶的活性 | 第16页 |
| ·其他活性 | 第16页 |
| ·类风湿性关节炎概述 | 第16-18页 |
| ·类风湿性关节炎的病因 | 第16-17页 |
| ·类风湿性关节炎的主要症状 | 第17-18页 |
| ·佐剂性关节炎动物模型 | 第18页 |
| ·立题背景意义 | 第18-20页 |
| 第二章 具有自由基清除活性的鱿鱼皮胶原蛋白肽酶解工艺优化研究 | 第20-30页 |
| ·材料与仪器 | 第20-21页 |
| ·原料 | 第20页 |
| ·试剂 | 第20-21页 |
| ·仪器设备 | 第21页 |
| ·试验方法 | 第21-23页 |
| ·鱿鱼皮基本成分分析 | 第21页 |
| ·原料预处理 | 第21页 |
| ·胶原蛋白肽水解酶的选择 | 第21-22页 |
| ·酶解产物自由基清除能力研究 | 第22页 |
| ·胶原蛋白肽酶解条件研究 | 第22-23页 |
| ·结果与分析 | 第23-29页 |
| ·基本组成成分 | 第23页 |
| ·水解酶种类的选择 | 第23-24页 |
| ·单因素实验 | 第24-27页 |
| ·正交实验 | 第27-29页 |
| ·验证实验 | 第29页 |
| ·结论 | 第29-30页 |
| 第三章 胶原蛋白肽对 AA 大鼠 FLS 的抑制作用及其机制 | 第30-40页 |
| ·材料与仪器 | 第30-31页 |
| ·细胞株 | 第30页 |
| ·实验试剂 | 第30页 |
| ·主要仪器 | 第30-31页 |
| ·试验方法 | 第31-34页 |
| ·细胞培养 | 第31-32页 |
| ·胶原蛋白活性肽的初步分离 | 第32页 |
| ·不同组分胶原蛋白肽对 AA 大鼠 FLS 的抑制研究 | 第32-33页 |
| ·SCH4 的细胞抑制作用研究 | 第33页 |
| ·抑制后细胞形态观察 | 第33页 |
| ·流式细胞仪分析细胞凋亡 | 第33页 |
| ·胶原蛋白活性肽对二氢叶酸还原酶作用研究 | 第33-34页 |
| ·统计学分析 | 第34页 |
| ·结果 | 第34-38页 |
| ·抑制 AA 大鼠 FLS 活性肽的初步分离 | 第34-35页 |
| ·SCH4 对 AA 大鼠 FLS 增殖抑制作用 | 第35页 |
| ·细胞形态学观察 | 第35-37页 |
| ·流式细胞术检测结果 | 第37-38页 |
| ·二氢叶酸还原酶抑制率的测定 | 第38页 |
| ·讨论 | 第38-40页 |
| 第四章 胶原蛋白肽的理化和功能性质研究 | 第40-51页 |
| ·材料与仪器 | 第40页 |
| ·实验试剂 | 第40页 |
| ·主要仪器 | 第40页 |
| ·实验方法 | 第40-43页 |
| ·紫外吸收光谱分析 | 第40-41页 |
| ·红外光谱特征 | 第41页 |
| ·水中溶解度测定 | 第41页 |
| ·粘度测定 | 第41页 |
| ·水合性质测定 | 第41-42页 |
| ·吸油性 | 第42页 |
| ·起泡及泡沫稳定性 | 第42页 |
| ·乳化能力 | 第42-43页 |
| ·结果与讨论 | 第43-50页 |
| ·紫外扫描图谱 | 第43页 |
| ·红外光谱特征 | 第43-44页 |
| ·水中溶解度测定 | 第44-45页 |
| ·粘度测定 | 第45-46页 |
| ·水合性质测定 | 第46-47页 |
| ·吸油性 | 第47-48页 |
| ·起泡及泡沫稳定性 | 第48-49页 |
| ·乳化能力的测定 | 第49-50页 |
| ·本章小结： | 第50-51页 |
| 第五章 结论 | 第51-53页 |
| ·主要结论 | 第51-52页 |
| ·展望 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-57页 |
| 致谢 | 第57-59页 |
| 在读期间发表的学术论文及研究成果 | 第59页 |
