摘要 | 第1-6页 |
Abstract | 第6-11页 |
第一章 绪论 | 第11-23页 |
·生物催化不对称还原反应 | 第11页 |
·生物催化不对称还原的核心科学问题 | 第11-16页 |
·反应途径的理性设计及底物的影响 | 第11-13页 |
·工业特性生物催化剂的筛选与改造 | 第13-15页 |
·利用过程工程集成技术提高生物催化不对称还原反应效率 | 第15-16页 |
·光学纯α-羟基酸的重要性 | 第16页 |
·生物催化不对称还原法合成光学纯α-羟基酸 | 第16-20页 |
·研究进展 | 第16-18页 |
·研究中存在的问题 | 第18-20页 |
·本研究的思路和内容 | 第20-23页 |
第二章 高稳定性酵母全细胞不对称还原α-酮酸及其底物特异性的研究 | 第23-33页 |
·前言 | 第23-24页 |
·材料与方法 | 第24-26页 |
·菌种 | 第24页 |
·培养基 | 第24页 |
·主要试剂 | 第24页 |
·主要仪器 | 第24-25页 |
·研究方法 | 第25-26页 |
·结果与讨论 | 第26-31页 |
·高稳定性微生物的选择 | 第26-27页 |
·S.ellipsoideus 的操作稳定性研究 | 第27-29页 |
·S.ellipsoideus 底物特异性的研究 | 第29-31页 |
·本章小结 | 第31-33页 |
第三章 S.ellipsoideus D-扁桃酸脱氢酶的纯化及酶学性质研究 | 第33-45页 |
·前言 | 第33页 |
·材料与方法 | 第33-37页 |
·菌种 | 第33页 |
·培养基 | 第33页 |
·主要试剂 | 第33-34页 |
·主要仪器 | 第34页 |
·研究方法 | 第34-37页 |
·结果与讨论 | 第37-44页 |
·超声波破碎条件的影响 | 第37页 |
·硫酸铵饱和度的确定 | 第37-38页 |
·柱层析纯化结果 | 第38-40页 |
·SDS-PAGE 检验D-扁桃酸脱氢酶纯度 | 第40页 |
·各步纯化倍数及酶活回收率 | 第40-41页 |
·D-扁桃酸脱氢酶的酶学性质研究 | 第41-44页 |
·本章小结 | 第44-45页 |
第四章 S.ellipsoideus 全细胞不对称还原α-酮酸的反应过程研究 | 第45-59页 |
·前言 | 第45页 |
·材料与方法 | 第45-47页 |
·菌种 | 第45页 |
·培养基 | 第45页 |
·主要试剂 | 第45页 |
·主要仪器 | 第45页 |
·研究方法 | 第45-47页 |
·结果与讨论 | 第47-57页 |
·不对称还原反应条件的研究 | 第47-51页 |
·转化过程曲线及转化初期停滞现象的发现 | 第51页 |
·转化初期停滞现象原因分析 | 第51-54页 |
·提高时空效率的研究 | 第54-57页 |
·本章小结 | 第57-59页 |
第五章 利用α-酮酯底物降低全细胞传质阻力提高催化效率的研究 | 第59-73页 |
·前言 | 第59页 |
·材料与方法 | 第59-62页 |
·菌种 | 第59页 |
·培养基 | 第59-60页 |
·主要试剂 | 第60页 |
·主要仪器 | 第60页 |
·研究方法 | 第60-62页 |
·结果与讨论 | 第62-72页 |
·微生物的筛选 | 第62-64页 |
·不对称还原反应过程的研究 | 第64-70页 |
·转化过程曲线 | 第70-71页 |
·催化剂的操作稳定性 | 第71-72页 |
·本章小结 | 第72-73页 |
第六章 原位分离技术解除α-酮酯还原中的底物/产物抑制 | 第73-83页 |
·前言 | 第73页 |
·材料与方法 | 第73-75页 |
·菌种 | 第73页 |
·培养基 | 第73页 |
·主要试剂 | 第73页 |
·主要仪器 | 第73页 |
·研究方法 | 第73-75页 |
·结果与讨论 | 第75-82页 |
·底物/产物抑制对不对称还原的影响 | 第75-76页 |
·分批补加底物的生物转化过程 | 第76-77页 |
·引入吸附树脂的生物转化过程 | 第77-82页 |
·不同转化方式的比较 | 第82页 |
·本章小结 | 第82-83页 |
结论与展望 | 第83-85页 |
主要结论 | 第83-84页 |
研究展望 | 第84-85页 |
论文创新点 | 第85-86页 |
致谢 | 第86-87页 |
参考文献 | 第87-98页 |
附录:作者在攻读博士学位期间发表的论文 | 第98页 |