| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第11-12页 |
| 前言 | 第12-15页 |
| 研究现状、成果 | 第12-14页 |
| 研究目的、方法 | 第14-15页 |
| 一、白介素-1受体阻滞剂对人胰淀素所致胰岛细胞炎症及凋亡的影响 | 第15-33页 |
| 1.1 材料和方法 | 第15-17页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第15页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第15页 |
| 1.1.3 主要仪器 | 第15-16页 |
| 1.1.4 主要溶液的配制 | 第16-17页 |
| 1.2 实验方法 | 第17-25页 |
| 1.2.1 大鼠的原代胰岛细胞的分离与培养 | 第17-18页 |
| 1.2.2 胰岛活性鉴定 | 第18页 |
| 1.2.3 实验分组 | 第18-19页 |
| 1.2.4 Annexin-V/PI荧光染色法检测胰岛细胞的死亡 | 第19页 |
| 1.2.5 RT-PCR法检测个基因mRNA的表达水平 | 第19-21页 |
| 1.2.6 蛋白质印迹法检测IL-1β蛋白的表达情况 | 第21-24页 |
| 1.2.7 硫磺素T荧光检测淀粉样纤维聚集 | 第24-25页 |
| 1.2.8 统计学方法 | 第25页 |
| 1.3 实验结果 | 第25-30页 |
| 1.3.1 分离的胰岛细胞形态学观察 | 第25页 |
| 1.3.2 台盼蓝染色检测胰岛细胞活力 | 第25-26页 |
| 1.3.3 各组胰岛细胞的凋亡情况 | 第26-28页 |
| 1.3.3.1 Annexin-V/PI荧光染色法检测胰岛细胞死亡情况 | 第26-27页 |
| 1.3.3.2 凋亡相关基因的检测 | 第27-28页 |
| 1.3.4 各组胰岛细胞的炎症表达与分泌 | 第28-29页 |
| 1.3.4.1 各组炎症因子基因mRNA的表达水平 | 第28页 |
| 1.3.4.2 IL-1β蛋白的表达 | 第28-29页 |
| 1.3.5 hIAPP聚集性以及IL-1Ra对其聚集性的影响 | 第29-30页 |
| 1.4 讨论 | 第30-32页 |
| 1.5 小结 | 第32-33页 |
| 二、利拉鲁肽对人胰淀素所致胰岛细胞炎症及凋亡的影响 | 第33-50页 |
| 2.1 实验材料和方法 | 第33-34页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第33页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第33-34页 |
| 2.1.3 主要溶液的配制 | 第34页 |
| 2.2 实验方法 | 第34-38页 |
| 2.2.1 大鼠的原代胰岛细胞的分离与培养 | 第34页 |
| 2.2.2 胰岛活性鉴定 | 第34-35页 |
| 2.2.3 实验分组 | 第35页 |
| 2.2.4 Annexin-V/PI荧光染色法检测胰岛细胞的死亡 | 第35页 |
| 2.2.5 实时荧光定量检测mRNA表达水平 | 第35-36页 |
| 2.2.6 酶联免疫吸附试验实验检测培养液中IL-1β的分泌情况 | 第36-37页 |
| 2.2.7 硫磺素T荧光检测淀粉样纤维聚集 | 第37-38页 |
| 2.2.8 透射电镜检测淀粉样纤维聚集 | 第38页 |
| 2.3 实验结果 | 第38-43页 |
| 2.3.1 AO/PI染色检测胰岛细胞的活力 | 第38-39页 |
| 2.3.2 各组胰岛细胞炎症相关基因mRNA相对表达量 | 第39页 |
| 2.3.3 各组细胞培养液中IL-1β含量 | 第39-40页 |
| 2.3.4 各组胰岛细胞的死亡 | 第40-41页 |
| 2.3.5 各组凋亡相关基因表达的变化 | 第41-42页 |
| 2.3.6 探讨利拉鲁肽对人胰淀素聚集的影响 | 第42-43页 |
| 2.3.6.1 硫磺素检测人胰淀素动态聚集情况 | 第42-43页 |
| 2.3.6.2 透射电镜检测已形成的纤维情况 | 第43页 |
| 2.4 讨论 | 第43-49页 |
| 2.5 小结 | 第49页 |
| 2.6 药物浓度说明 | 第49-50页 |
| 结论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-60页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第60-61页 |
| 综述 胰岛内淀粉样蛋白的细胞毒性作用 | 第61-73页 |
| 综述参考文献 | 第68-73页 |
| 致谢 | 第73-74页 |
| 个人简历 | 第74页 |
