摘要 | 第3-5页 |
ABSTRACT | 第5-6页 |
缩略表 | 第10-11页 |
第一章 文献综述 | 第11-22页 |
1 植物叶绿体发育及相关基因 | 第11-13页 |
2 光合系统 | 第13-19页 |
2.1 PS Ⅰ复合物 | 第13-16页 |
2.1.1 光合系统Ⅰ的基本结构 | 第13-14页 |
2.1.2 PS Ⅰ的核心亚基:大亚基PsaA和PsaB | 第14-15页 |
2.1.3 PS Ⅰ的受体位点亚基:PsaC,PsaD和PsaE | 第15页 |
2.1.4 膜表面亚基:PsaF,PsaJ,PsaK和PsaX | 第15-16页 |
2.2 PSⅡ复合物 | 第16-19页 |
2.2.1 PSⅡ复合物相关蛋白 | 第17-19页 |
3 叶绿素合成 | 第19-21页 |
3.1 叶绿素合成基本途径 | 第19-20页 |
3.2 叶绿素生物合成途径调节 | 第20-21页 |
4 研究意义 | 第21-22页 |
第二章 水稻DGP1下游调控基因的RNA-Seq分析 | 第22-33页 |
1 材料与方法 | 第22-24页 |
1.1 材料、种植方法及取样 | 第22页 |
1.2 总RNA提取及纯化 | 第22-23页 |
1.3 转录组分析 | 第23-24页 |
1.4 差异基因的筛选及生物信息学分析 | 第24页 |
2 结果与分析 | 第24-31页 |
2.1 dgp1、WT、DGP1-OE植株RNA-Seq差异基因的比较 | 第24-26页 |
2.2 候选差异基因生物信息学分析 | 第26-31页 |
2.2.1 候选差异基因GO分析 | 第26-29页 |
2.2.2 候选差异基因KEGG分析 | 第29-31页 |
3 讨论 | 第31-33页 |
第三章 水稻DGP1影响光合相关基因表达与叶绿体发育的分析 | 第33-47页 |
1 材料与方法 | 第33-37页 |
1.1 植物材料及取样 | 第33页 |
1.2 基因表达分析 | 第33-34页 |
1.2.1 总RNA提取及纯化 | 第33页 |
1.2.2 cDNA第一条链的合成 | 第33-34页 |
1.2.3 实时荧光qPCR表达分析 | 第34页 |
1.3 Western blot蛋白检测 | 第34-36页 |
1.3.1 水稻总蛋白的提取 | 第34-35页 |
1.3.2 Western blot | 第35-36页 |
1.4 原生质体观察 | 第36-37页 |
1.4.1 原生质体的制备 | 第36-37页 |
1.4.2 激光共聚焦显微镜成像检测 | 第37页 |
1.5 电镜切片制作 | 第37页 |
2 结果与分析 | 第37-45页 |
2.1 光合相关基因的表达分析 | 第37-41页 |
2.1.1 dgp1突变体、WT、DGP1-OE植株穗部颖壳表达分析 | 第37-40页 |
2.1.2 dgp1突变体、WT、DGP1-OE植株叶表达分析 | 第40-41页 |
2.2 dgp1突变体、WT、DGP1-OE植株蛋白检测 | 第41-42页 |
2.3 dgp1突变体、WT、DGP1-OE植株叶绿体观察 | 第42-43页 |
2.4 dgp1突变体、WT、DGP1-OE植株叶绿体电镜切片分析 | 第43-45页 |
3 讨论 | 第45-47页 |
第四章 水稻DGP1启动子的转录活性分析 | 第47-56页 |
1 材料与方法 | 第47-52页 |
1.1 植物材料及种植 | 第47页 |
1.2 菌种 | 第47页 |
1.3 DGP1分段启动子载体构建 | 第47-51页 |
1.3.1 DGP1启动子分段分析 | 第47-48页 |
1.3.2 DGP1分段序列融合表达载体构建 | 第48-51页 |
1.4 DGP1分段启动子瞬时表达分析 | 第51-52页 |
1.4.1 农杆菌GV3101感受态细胞制备及转化 | 第51页 |
1.4.2 农杆菌侵染 | 第51-52页 |
1.4.3 激光共聚焦显微镜成像检测 | 第52页 |
2 结果与分析 | 第52-54页 |
2.1 DGP1分段启动子片段载体构建 | 第52-53页 |
2.2 DGP1分段启动子的瞬时表达 | 第53-54页 |
3 讨论 | 第54-56页 |
参考文献 | 第56-66页 |
附录 | 第66-70页 |
攻读学位期间取得的研究成果 | 第70-71页 |
致谢 | 第71-73页 |
浙江师范大学学位论文诚信承诺书 | 第73页 |