| 中文摘要 | 第9-12页 |
| 英文摘要 | 第12-14页 |
| 本论文主要创新点 | 第15-16页 |
| 第一章 绪论 | 第16-54页 |
| 1.1 DNA序列检测的原理和方法 | 第16-27页 |
| 1.1.1 基本原理 | 第16-18页 |
| 1.1.2 主要检测方法 | 第18-27页 |
| 1.2 卟啉模拟酶在生物分析领域中的应用 | 第27-31页 |
| 1.2.1 卟啉模拟酶在比色检测中的应用 | 第27-28页 |
| 1.2.2 卟啉模拟酶在荧光检测中的应用 | 第28-29页 |
| 1.2.3 卟啉模拟酶在化学发光检测中的应用 | 第29-30页 |
| 1.2.4 卟啉模拟酶在电化学检测中的应用 | 第30-31页 |
| 1.3 二维纳米材料在生物分析领域中的应用 | 第31-45页 |
| 1.3.1 石墨烯在荧光生物传感领域的应用 | 第31-38页 |
| 1.3.2 石墨烯在比色生物传感领域的应用 | 第38-40页 |
| 1.3.3 石墨烯在化学发光生物传感领域的应用 | 第40页 |
| 1.3.4 石墨烯在电致化学发光生物传感领域的应用 | 第40-41页 |
| 1.3.5 石墨烯在表面增强拉曼散射生物传感领域的应用 | 第41页 |
| 1.3.6 石墨烯在其它光学生物传感领域的应用 | 第41-42页 |
| 1.3.7 石墨烯在电化学生物传感领域的应用进展 | 第42-43页 |
| 1.3.8 类石墨烯二维纳米材料在生物传感领域的应用进展 | 第43-45页 |
| 1.4 DNA检测方法学的发展趋势 | 第45-46页 |
| 1.5 本论文的主要研究工作 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-54页 |
| 第二章 石墨烯负载三价铁卟啉作为仿过氧化酶探针用于DNA电化学检测 | 第54-68页 |
| 2.1 引言 | 第54-56页 |
| 2.2 实验部分 | 第56-58页 |
| 2.2.1 材料与试剂 | 第56-57页 |
| 2.2.2 仪器和电化学测量步骤 | 第57页 |
| 2.2.3 卟啉基HRP模拟物的制备 | 第57页 |
| 2.2.4 金纳米粒子-单壁碳纳米角复合物的制备 | 第57-58页 |
| 2.2.5 电化学DNA传感器组装和检测 | 第58页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第58-65页 |
| 2.3.1 FeTMPyP-streptavidin-GO和AuNPs-SWCNH的表征 | 第58-60页 |
| 2.3.2 FeTMPyP-streptavidin-GO复合物的催化性能研究 | 第60-61页 |
| 2.3.3 电化学DNA传感器的组装与目标DNA的检测 | 第61-64页 |
| 2.3.4 电化学DNA传感器的特异性、抗干扰能力和重现性 | 第64-65页 |
| 2.4 结论 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-68页 |
| 第三章 基于氮化碳纳米片荧光猝灭效应的多功能荧光检测应用 | 第68-89页 |
| 3.1 引言 | 第68-72页 |
| 3.2 实验部分 | 第72-75页 |
| 3.2.1 材料与试剂 | 第72-73页 |
| 3.2.2 仪器和荧光测量步骤 | 第73-74页 |
| 3.2.3 CNNS的制备 | 第74页 |
| 3.2.4 均相荧光检测DNA | 第74页 |
| 3.2.5 比率荧光检测DNA | 第74页 |
| 3.2.6 均相荧光检测Hg~(2+) | 第74-75页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第75-85页 |
| 3.3.1 CNNS的表征 | 第75-76页 |
| 3.3.2 CNNS的荧光猝灭性能与猝灭机制 | 第76-80页 |
| 3.3.3 不引入或引入Exo Ⅲ催化循环荧光检测DNA | 第80-82页 |
| 3.3.4 比率荧光检测DNA | 第82-84页 |
| 3.3.5 荧光检测Hg~(2+) | 第84-85页 |
| 3.4 结论 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-89页 |
| 第四章 氧化石墨烯调控的DNA-hemin过氧化酶活性及在DNA荧光检测中的应用 | 第89-104页 |
| 4.1 引言 | 第89-91页 |
| 4.2 实验部分 | 第91-93页 |
| 4.2.1 材料与试剂 | 第91-92页 |
| 4.2.2 仪器和凝胶电泳实验 | 第92-93页 |
| 4.2.3 GO对探针的抑制效应 | 第93页 |
| 4.2.4 均相荧光检测DNA | 第93页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第93-101页 |
| 4.3.1 GO对探针催化活性的抑制效应 | 第93-96页 |
| 4.3.2 GO对探针过氧化酶活性抑制效应的影响因素 | 第96-97页 |
| 4.3.3 GO对探针催化动力学的影响 | 第97-98页 |
| 4.3.4 凝胶电泳研究探针与GO的相互作用 | 第98页 |
| 4.3.5 均相荧光检测DNA | 第98-101页 |
| 4.4 结论 | 第101页 |
| 参考文献 | 第101-104页 |
| 第五章 双hemin标记核酸链的催化性能: 构型依赖性及在DNA荧光检测中的应用 | 第104-117页 |
| 5.1 引言 | 第104-106页 |
| 5.2 实验部分 | 第106-109页 |
| 5.2.1 材料与试剂 | 第106-108页 |
| 5.2.2 仪器 | 第108页 |
| 5.2.3 均相荧光检测DNA | 第108-109页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第109-114页 |
| 5.3.1 探针识别目标DNA后的结构变化 | 第109-110页 |
| 5.3.2 探针识别目标DNA后的催化性能变化 | 第110-112页 |
| 5.3.3 对目标DNA进行均相荧光检测的条件优化 | 第112-113页 |
| 5.3.4 均相荧光检测DNA | 第113页 |
| 5.3.5 双hemin标记探针与分子信标、hemin-DNAzyme的检测性能比较 | 第113-114页 |
| 5.4 结论 | 第114页 |
| 参考文献 | 第114-117页 |
| 第六章 DNA链取代激活的hemin过氧化酶活性及在DNA荧光检测中的应用 | 第117-135页 |
| 6.1 引言 | 第117-119页 |
| 6.2 实验部分 | 第119-125页 |
| 6.2.1 材料与试剂 | 第119-124页 |
| 6.2.2 仪器 | 第124页 |
| 6.2.3 双链探针的退火制备 | 第124页 |
| 6.2.4 检测条件优化 | 第124-125页 |
| 6.2.5 均相荧光检测DNA | 第125页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第125-131页 |
| 6.3.1 双链探针识别目标DNA后的结构变化 | 第125-126页 |
| 6.3.2 探针识别目标DNA后的催化性能变化 | 第126-127页 |
| 6.3.3 双链探针支点长度的影响 | 第127-128页 |
| 6.3.4 对目标DNA进行均相荧光检测的条件优化 | 第128-129页 |
| 6.3.5 均相荧光检测DNA及检测特异性 | 第129-131页 |
| 6.4 结论 | 第131-132页 |
| 参考文献 | 第132-135页 |
| 附录 | 第135-137页 |
| 致谢 | 第137-139页 |
