| 缩略语表 | 第6-9页 |
| 中文摘要 | 第9-12页 |
| Abstract | 第12-15页 |
| 前言 | 第16-18页 |
| 文献回顾 | 第18-54页 |
| 实验一 Notch信号相关分子在慢性粒细胞白血病中的表达 | 第54-66页 |
| 1 实验仪器和材料 | 第54-55页 |
| 1.1 实验仪器 | 第54页 |
| 1.2 材料 | 第54-55页 |
| 2 方法 | 第55-57页 |
| 2.1 细胞培养 | 第55-56页 |
| 2.2 RNA提取 | 第56页 |
| 2.3 Real time PCR | 第56-57页 |
| 2.4 生物信息学分析 | 第57页 |
| 3 结果 | 第57-64页 |
| 3.1 不同类型白血病细胞系的Notch信号相关基因表达 | 第57-58页 |
| 3.2 不同类型白血病临床样本中Notch信号相关基因表达 | 第58-59页 |
| 3.3 不同CML分级中Notch信号相关基因表达 | 第59-60页 |
| 3.4 CML细胞系K562在Imatinib处理后Notch信号相关基因表达 | 第60-62页 |
| 3.5 验证基因芯片结果 | 第62-64页 |
| 4 讨论 | 第64-66页 |
| 实验二 Notch信号对慢性粒细胞白血病细胞及白血病干细胞的调控作用 | 第66-98页 |
| 1 实验仪器和材料 | 第66-70页 |
| 1.1 实验仪器 | 第66页 |
| 1.2 材料 | 第66-70页 |
| 2 方法 | 第70-76页 |
| 2.1 细胞培养 | 第70-71页 |
| 2.2 磁珠分选 | 第71页 |
| 2.3 细胞计数和存活率 | 第71-72页 |
| 2.4 组织染色-免疫组化和瑞士姬姆萨染色 | 第72页 |
| 2.5 流式细胞仪分析 | 第72页 |
| 2.6 RNA提取 | 第72-73页 |
| 2.7 细胞周期检测 | 第73页 |
| 2.8 细胞凋亡检测 | 第73页 |
| 2.9 BA+小鼠基因组提取和鉴定 | 第73-76页 |
| 2.10骨髓移植 | 第76页 |
| 2.11 mD1R纯化 | 第76页 |
| 2.12 全身给药 | 第76页 |
| 2.13 小鼠血常规检测 | 第76页 |
| 3 结果 | 第76-94页 |
| 3.1 培养并鉴定OP9-GPF/OP9-DL1细胞 | 第76-77页 |
| 3.2 激活Notch信号促进K562细胞生长 | 第77-80页 |
| 3.3 激活Notch信号不利于LSC细胞‘干性’的维持 | 第80-86页 |
| 3.4 激活Notch信号减弱伊马替尼对K562细胞的杀伤作用 | 第86-90页 |
| 3.5 激活Notch信号协同伊马替尼杀伤白血病干细胞 | 第90-93页 |
| 3.6 Notch激活剂mD1R能够促进BA+小鼠疾病形成 | 第93-94页 |
| 4 讨论 | 第94-98页 |
| 实验三 Notch信号对慢性粒细胞白血病细胞及白血病干细胞调控作用的分子机制研究 | 第98-123页 |
| 1 实验仪器和材料 | 第98-100页 |
| 1.1 实验仪器 | 第98页 |
| 1.2 材料 | 第98-100页 |
| 2 方法 | 第100-104页 |
| 2.1 生物信息学分析 | 第100-101页 |
| 2.2 Realtime PCR | 第101-103页 |
| 2.3 Wesern blot | 第103-104页 |
| 3 结果 | 第104-121页 |
| 3.1 Notch信号对K562细胞调节作用的相关重要分子筛选及验证 | 第104-113页 |
| 3.2 Notch信号对白血病干细胞调节作用的相关重要分子筛选及验证 | 第113-121页 |
| 4 讨论 | 第121-123页 |
| 小结 | 第123-125页 |
| 参考文献 | 第125-134页 |
| 个人简历和研究成果 | 第134-136页 |
| 致谢 | 第136-137页 |
