| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-45页 |
| 1.1 小麦杂种优势利用的进展 | 第13-14页 |
| 1.2 目前小麦杂种优势利用的几种主要途径 | 第14-23页 |
| 1.2.1 基于核质互作型小麦雄性不育的“三系法” | 第14-17页 |
| 1.2.2 小麦光温敏雄性不育系统 | 第17-20页 |
| 1.2.3 化杀剂技术诱导小麦雄性不育系统 | 第20-23页 |
| 1.3 小麦化杀剂诱导的生理型雄性不育的机理 | 第23-30页 |
| 1.3.1 显微结构研究 | 第23-24页 |
| 1.3.2 生理生化代谢研究 | 第24-26页 |
| 1.3.3 化学杀雄不育相关基因的分析 | 第26-30页 |
| 1.4 DNA 甲基化在植物生长发育中的作用 | 第30-42页 |
| 1.4.1 甲基化酶种类和功能 | 第31-32页 |
| 1.4.2 DNA 甲基化方式 | 第32-34页 |
| 1.4.3 植物 DNA 甲基化的生物学功能 | 第34-41页 |
| 1.4.4 植物 DNA 甲基化检测方法 | 第41-42页 |
| 1.5 本试验选题目的和意义 | 第42-44页 |
| 试验主要技术路线 | 第44-45页 |
| 第二章 小麦生理型雄性不育 DNA 甲基化图谱分析 | 第45-61页 |
| 2.1 材料和方法 | 第45-50页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第45-46页 |
| 2.1.2 试验仪器和试剂 | 第46页 |
| 2.1.3 小麦花药 DNA 提取和纯化 | 第46-47页 |
| 2.1.4 甲基化敏感扩增多态性试验 | 第47页 |
| 2.1.5 选增性扩增产物的 MSAP 电泳分析 | 第47-48页 |
| 2.1.6 MSAP 差异表达条带回收、二次扩增和纯化 | 第48-49页 |
| 2.1.7 目标基因克隆、测序和同源性分析 | 第49-50页 |
| 2.2 结果与分析 | 第50-58页 |
| 2.2.1 化学杂交剂诱导的雄性不育效果 | 第50-51页 |
| 2.2.2 化杀剂 SQ-1 对小麦花药基因组 DNA 甲基化程度的影响 | 第51-54页 |
| 2.2.3 化杀剂 SQ-1 对小麦花药 DNA 甲基化模式的影响 | 第54-56页 |
| 2.2.4 SQ-1 诱导小麦花药 MSAP 多态性片段的序列分析 | 第56-58页 |
| 2.3 讨论 | 第58-61页 |
| 2.3.1 化杀剂 SQ-1 对小麦花药 DNA 甲基化的影响 | 第58页 |
| 2.3.2 化杀剂 SQ-1 影响的甲基化差异基因 | 第58-61页 |
| 第三章 生理型雄性不育 DNA 甲基化对活性氧代谢的调节 | 第61-77页 |
| 3.1 材料与方法 | 第62-68页 |
| 3.1.1 供试材料和处理 | 第62页 |
| 3.1.2 试验仪器和试剂 | 第62页 |
| 3.1.3 活性氧含量测定和组织染色 | 第62-63页 |
| 3.1.4 丙二醛(MDA)含量的测定 | 第63页 |
| 3.1.5 抗氧化酶活力测定 | 第63-64页 |
| 3.1.6 小麦花药总 DNA 的提取和纯化 | 第64页 |
| 3.1.7 小麦花药总 RNA 的提取、纯化和反转录 | 第64-65页 |
| 3.1.8 小麦活性氧相关基因的表达分析 | 第65-66页 |
| 3.1.9 小麦花药 DNA 甲基化处理 | 第66-67页 |
| 3.1.10 目的序列的确定及引物设计 | 第67页 |
| 3.1.11 目的序列甲基化 PCR 扩增 | 第67页 |
| 3.1.12 目的序列连接转化和测序 | 第67-68页 |
| 3.1.13 活性氧合成抑制剂对小麦生理型不育系育性调控 | 第68页 |
| 3.2 结果与分析 | 第68-75页 |
| 3.2.1 化杀剂 SQ-1 对小麦花药活性氧含量的影响 | 第68-69页 |
| 3.2.2 化杀剂 SQ-1 对小麦花药抗氧化酶活性的影响 | 第69-71页 |
| 3.2.3 化杀剂 SQ-1 对小麦花药活性氧代谢基因表达水平的影响 | 第71-73页 |
| 3.2.4 化杀剂 SQ-1 对小麦花药 NOX 基因核心启动子区甲基化分析 | 第73-74页 |
| 3.2.5 活性氧合成抑制剂对小麦生理型不育系育性调控 | 第74-75页 |
| 3.3 讨论 | 第75-77页 |
| 3.3.1 植物细胞中的活性氧平衡 | 第75页 |
| 3.3.2 植物细胞中的活性氧与雄性不育的关系 | 第75-76页 |
| 3.3.3 生理型不育活性氧的 DNA 甲基化调控 | 第76页 |
| 3.3.4 植物细胞中活性氧的多重功能 | 第76-77页 |
| 第四章 小麦生理型雄性不育脂质代谢 | 第77-96页 |
| 4.1 材料与方法 | 第77-82页 |
| 4.1.1 供试材料和处理 | 第77页 |
| 4.1.2 试验仪器和试剂 | 第77-78页 |
| 4.1.3 不同处理花粉粒的细胞学和扫描电镜观察 | 第78页 |
| 4.1.4 不同时期花药组织切片和荧光显微镜观察 | 第78-80页 |
| 4.1.5 花药 RNA 提取、纯化和 cDNA 反转录以及 DNA 提取 | 第80页 |
| 4.1.6 花药不同发育时期 DNA ladder 试验 | 第80页 |
| 4.1.7 花药脂肪酸及其衍生物测定 | 第80-81页 |
| 4.1.8 花药脂质代谢 TaECR 基因克隆和序列分析 | 第81页 |
| 4.1.9 花药脂质代谢相关基因表达分析 | 第81-82页 |
| 4.2 结果分析 | 第82-93页 |
| 4.2.1 SQ-1 对花药发育的干扰作用 | 第82-85页 |
| 4.2.2 SQ-1 对花药脂肪族化合物组成的调节 | 第85-87页 |
| 4.2.3 小麦 TaECR 基因的序列分析 | 第87-90页 |
| 4.2.4 SQ-1 对花药相关基因表达调控 | 第90-93页 |
| 4.3 讨论 | 第93-96页 |
| 4.3.1 活性氧代谢与细胞凋亡 | 第93-94页 |
| 4.3.2 化杀剂 SQ-1 处理对花药脂肪族代谢的影响 | 第94-96页 |
| 第五章 主要结论及创新点 | 第96-98页 |
| 5.1 主要结论 | 第96页 |
| 5.2 主要创新点 | 第96-98页 |
| 参考文献 | 第98-117页 |
| 中英文缩略词对照表 | 第117-118页 |
| 致谢 | 第118-119页 |
| 作者简介 | 第119页 |
