| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 目录 | 第6-8页 |
| 引言 | 第8-9页 |
| 第一部分 文献综述 | 第9-19页 |
| 1 植物热机信号通路的研究近况 | 第9-11页 |
| 1.1 热激蛋白(HEAT SHOCK PROEIN,HSP) | 第9-10页 |
| 1.2 热激因子(HEAT SHOCK FACTOR,HSF) | 第10页 |
| 1.3 热激应答中的其他组分 | 第10-11页 |
| 2. 植物中H_2O_2信号分子的研究现状 | 第11-14页 |
| 2.1 H_2O_2的产生 | 第12页 |
| 2.2 H_2O_2调控的生理过程 | 第12-13页 |
| 2.3 H_2O_2的信号网络 | 第13-14页 |
| 3 植物中NO(NITRIC OXIDE)信号分子的研究现状 | 第14-18页 |
| 3.1 NO的产生 | 第14-15页 |
| 3.2 NO调控的生理过程 | 第15-16页 |
| 3.3 NO的信号网络 | 第16-18页 |
| 4 H_2O_2与NO的相互作用 | 第18-19页 |
| 第二部分 实验结果 | 第19-36页 |
| 1 实验材料、试剂以及试验方法 | 第19-26页 |
| 1.1 实验材料 | 第19页 |
| 1.2 实验试剂 | 第19页 |
| 1.3 完全MS培养基配方 | 第19-20页 |
| 1.4 常用缓冲液 | 第20-21页 |
| 1.5 拟南芥种子的种植 | 第21页 |
| 1.6 热激处理下拟南芥幼苗的存活率 | 第21页 |
| 1.7 拟南芥幼苗根部NO含量的荧光测定 | 第21页 |
| 1.8 拟南芥幼苗根部H_2O_2含量的荧光测定 | 第21-22页 |
| 1.9 SNP、SNAP和H_2O_2处理拟南芥幼苗 | 第22页 |
| 1.10 RNA的提取(利用TransZol RNA抽提试剂) | 第22页 |
| 1.11 两步法RT-PCR | 第22-23页 |
| 1.12 Real Time-PCR | 第23-24页 |
| 1.13 拟南芥植株蛋白的提取 | 第24页 |
| 1.14 SDS-PAGE | 第24页 |
| 1.15 Western blot检测目的蛋白 | 第24-26页 |
| 2 实验结果 | 第26-33页 |
| 2.1 热激诱导内源H_2O_2的积累 | 第26页 |
| 2.2 热激对NADPH氧化酶缺失突变体存活率及其内源H_2O_2含量的影响 | 第26-28页 |
| 2.3 外源NO供体对Atrbohb、Atrbohd以及Atrbohb/d突变体幼苗耐热性的影响 | 第28-29页 |
| 2.4 外源施加H_2O_2对于WT与noa1(rif1)耐热性和WT与noa(rif1)内源H_2O_2含量的影响 | 第29-30页 |
| 2.5 外源施加H_2O_2对内源NO含量和NOA1表达水平的影响以及SNP对内源H_2O_2含量的影响 | 第30-32页 |
| 2.6 热激后WT与Atrbohb/d突变体中HSPs的表达与HSP21的积累 | 第32-33页 |
| 3 讨论 | 第33-36页 |
| 3.1 H_2O_2与拟南芥耐热的关系 | 第33页 |
| 3.2 H_2O_2与NO在热激信号通路中的关系 | 第33页 |
| 3.3 H_2O_2影响拟南芥耐热的机理 | 第33-36页 |
| 参考文献 | 第36-45页 |
| 英文缩写 | 第45-46页 |
| 致谢 | 第46-47页 |
| 个人简历 | 第47页 |
