| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 缩写符号说明 | 第7-14页 |
| 第一章 绪论 | 第14-26页 |
| 1.1 晚期糖基化终末产物 | 第14-17页 |
| 1.1.1 AGEs的种类、结构及形成途径 | 第14-15页 |
| 1.1.2 体内AGEs与慢性疾病 | 第15-17页 |
| 1.2 食品中晚期糖基化终末产物 | 第17-19页 |
| 1.2.1 吸收与排泄 | 第18页 |
| 1.2.2 体内分布 | 第18页 |
| 1.2.3 代谢途径 | 第18页 |
| 1.2.4 暴露评估 | 第18-19页 |
| 1.3 食品中晚期糖基化终末产物对疾病的影响 | 第19-20页 |
| 1.3.1 糖尿病 | 第19页 |
| 1.3.2 肾病 | 第19页 |
| 1.3.3 健康个体 | 第19页 |
| 1.3.4 动物实验 | 第19-20页 |
| 1.4 晚期糖基化终末产物的研究方法 | 第20-21页 |
| 1.4.1 仪器分析法 | 第20页 |
| 1.4.2 酶联免疫法（ELISA） | 第20-21页 |
| 1.5 代谢组学简介 | 第21-24页 |
| 1.5.1 代谢组学研究方法简介 | 第21-22页 |
| 1.5.2 代谢组学的应用 | 第22-24页 |
| 1.6 立题背景与意义 | 第24页 |
| 1.7 主要研究内容 | 第24-26页 |
| 第二章 普通饮食条件下长期摄入游离态CML对成年大鼠组织的影响 | 第26-36页 |
| 2.1 前言 | 第26页 |
| 2.2 实验材料与主要仪器 | 第26-27页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第26-27页 |
| 2.2.2 主要仪器 | 第27页 |
| 2.3 实验方法 | 第27-30页 |
| 2.3.1 动物实验 | 第27页 |
| 2.3.2 血清生化参数的测定 | 第27-28页 |
| 2.3.3 结合态CML的提取与纯化 | 第28页 |
| 2.3.4 结合态CML的测定 | 第28-29页 |
| 2.3.5 方法学验证 | 第29页 |
| 2.3.6 统计方法 | 第29-30页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第30-35页 |
| 2.4.1 方法学考察 | 第30-31页 |
| 2.4.2 血清中结合态CML的含量 | 第31-32页 |
| 2.4.3 组织中结合态CML的含量 | 第32-33页 |
| 2.4.4 血清生化参数 | 第33-34页 |
| 2.4.5 常规生理指标 | 第34页 |
| 2.4.6 能量代谢 | 第34-35页 |
| 2.5 本章小结 | 第35-36页 |
| 第三章 普通饮食条件下长期摄入游离态CML对成年大鼠内源代谢物的影响 | 第36-45页 |
| 3.1 前言 | 第36页 |
| 3.2 实验材料与主要仪器 | 第36-37页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第36页 |
| 3.2.2 主要仪器 | 第36-37页 |
| 3.3 实验方法 | 第37-38页 |
| 3.3.1 动物实验 | 第37页 |
| 3.3.2 样本前处理 | 第37-38页 |
| 3.3.3 GC-TOF/MS分析 | 第38页 |
| 3.3.4 数据处理 | 第38页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第38-43页 |
| 3.4.1 内源性代谢物GC-TOF/MS分析 | 第38-39页 |
| 3.4.2 差异性内源代谢物的筛选 | 第39-40页 |
| 3.4.3 热图及代谢通路分析 | 第40-43页 |
| 3.5 本章小结 | 第43-45页 |
| 第四章 高脂饮食条件下长期摄入游离态CML对成年大鼠组织的影响 | 第45-54页 |
| 4.1 前言 | 第45页 |
| 4.2 实验材料与主要仪器 | 第45-46页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第45-46页 |
| 4.2.2 主要仪器 | 第46页 |
| 4.3 实验方法 | 第46-47页 |
| 4.3.1 动物实验 | 第46页 |
| 4.3.2 血清生化参数的测定 | 第46-47页 |
| 4.3.3 结合态CML的提取与纯化 | 第47页 |
| 4.3.4 结合态CML的测定 | 第47页 |
| 4.3.5 游离态CML与组织蛋白的结合方式 | 第47页 |
| 4.3.6 统计方法 | 第47页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第47-53页 |
| 4.4.1 血清与组织中结合态CML的含量 | 第47-49页 |
| 4.4.2 游离态CML与组织蛋白的结合方式 | 第49-50页 |
| 4.4.3 血清生化参数 | 第50页 |
| 4.4.4 常规生理指标 | 第50-51页 |
| 4.4.5 口服葡萄糖耐受试验 | 第51-52页 |
| 4.4.6 能量代谢 | 第52-53页 |
| 4.5 本章小结 | 第53-54页 |
| 第五章 高脂饮食条件下长期摄入游离态CML对成年大鼠内源代谢物的影响 | 第54-62页 |
| 5.1 前言 | 第54页 |
| 5.2 实验材料与主要仪器 | 第54页 |
| 5.2.1 实验材料 | 第54页 |
| 5.2.2 主要仪器 | 第54页 |
| 5.3 实验方法 | 第54-56页 |
| 5.3.1 动物实验 | 第54-55页 |
| 5.3.2 样本前处理 | 第55页 |
| 5.3.3 GC-TOF/MS分析 | 第55-56页 |
| 5.3.4 数据处理 | 第56页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第56-60页 |
| 5.4.1 内源性代谢物GC-TOF/MS分析 | 第56-57页 |
| 5.4.2 差异性内源代谢物的筛选 | 第57-58页 |
| 5.4.3 热图及代谢通路分析 | 第58-60页 |
| 5.5 本章小结 | 第60-62页 |
| 第六章 不同剂量游离态CML的摄入对幼年大鼠组织的影响 | 第62-71页 |
| 6.1 前言 | 第62页 |
| 6.2 实验材料与主要仪器 | 第62-63页 |
| 6.2.1 实验材料 | 第62-63页 |
| 6.2.2 主要仪器 | 第63页 |
| 6.3 实验方法 | 第63-64页 |
| 6.3.1 准备饲料 | 第63页 |
| 6.3.2 动物实验 | 第63-64页 |
| 6.3.3 尿蛋白测定 | 第64页 |
| 6.3.4 血液学分析 | 第64页 |
| 6.3.5 能量代谢 | 第64页 |
| 6.3.6 血清生化参数的测定 | 第64页 |
| 6.3.7 组织中结合态CML的测定 | 第64页 |
| 6.3.8 统计方法 | 第64页 |
| 6.4 结果与讨论 | 第64-69页 |
| 6.4.1 组织中结合态CML含量 | 第64-65页 |
| 6.4.2 肝肾功能血生化指标 | 第65-67页 |
| 6.4.3 血液学参数 | 第67-68页 |
| 6.4.4 能量代谢 | 第68-69页 |
| 6.4.5 常规生理指标 | 第69页 |
| 6.5 本章小结 | 第69-71页 |
| 第七章 高剂量游离态CML的摄入对幼年大鼠内源代谢物的影响 | 第71-81页 |
| 7.1 前言 | 第71页 |
| 7.2 实验材料与主要仪器 | 第71页 |
| 7.2.1 实验材料 | 第71页 |
| 7.2.2 主要仪器 | 第71页 |
| 7.3 实验方法 | 第71-73页 |
| 7.3.1 准备饲料 | 第71页 |
| 7.3.2 动物实验 | 第71-72页 |
| 7.3.3 样本前处理 | 第72页 |
| 7.3.4 GC-TOF/MS分析 | 第72-73页 |
| 7.3.5 数据处理 | 第73页 |
| 7.4 结果与讨论 | 第73-80页 |
| 7.4.1 内源性代谢物的变化 | 第73-74页 |
| 7.4.2 差异性内源代谢物的筛选 | 第74-75页 |
| 7.4.3 热图及代谢通路分析 | 第75-80页 |
| 7.5 本章小结 | 第80-81页 |
| 主要结论与展望 | 第81-82页 |
| 主要结论 | 第81页 |
| 展望 | 第81-82页 |
| 论文创新点 | 第82-83页 |
| 致谢 | 第83-85页 |
| 参考文献 | 第85-99页 |
| 附录: 作者在攻读博士学位期间发表的论文 | 第99页 |
