| 中文摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一章 前言 | 第9-27页 |
| 1.1 课题研究背景 | 第9-10页 |
| 1.2 裂殖壶菌简介 | 第10-14页 |
| 1.2.1 裂殖壶菌的概述 | 第10-11页 |
| 1.2.2 裂殖壶菌的营养成分分析 | 第11-12页 |
| 1.2.3 裂殖壶菌的应用 | 第12-14页 |
| 1.2.3.1 在视觉系统和神经系统的生长发育中的作用 | 第12页 |
| 1.2.3.2 构成细胞基本组成成分 | 第12-13页 |
| 1.2.3.3 在预防心血管疾病的作用 | 第13页 |
| 1.2.3.4 免疫调节方面的作用 | 第13页 |
| 1.2.3.5 抗炎症作用 | 第13-14页 |
| 1.2.3.6 抗氧化作用 | 第14页 |
| 1.3 裂殖壶菌体内物质提取 | 第14-16页 |
| 1.3.1 直接酶解藻体 | 第14-15页 |
| 1.3.2 将藻体破碎后酶解 | 第15页 |
| 1.3.3 将海藻制成粉末后酶解 | 第15-16页 |
| 1.3.4 将藻体冻溶后酶解 | 第16页 |
| 1.4 抗炎模型及炎症机制 | 第16-19页 |
| 1.4.1 常见的小鼠炎症模型 | 第16-18页 |
| 1.4.1.1 二甲苯致小鼠耳廓肿胀模型 | 第16页 |
| 1.4.1.2 冰醋酸引起毛细血管通过性增高模型 | 第16-17页 |
| 1.4.1.3 用蛋清致炎小鼠足趾肿胀法 | 第17页 |
| 1.4.1.4 热板法致小鼠疼痛反应模型 | 第17页 |
| 1.4.1.5 尾部加压法致小鼠疼痛 | 第17-18页 |
| 1.4.2 常见炎症小鼠体内机制研究 | 第18-19页 |
| 1.4.2.1 炎症组织中前列腺素E2和一氧化氮含量 | 第18页 |
| 1.4.2.2 炎症组织中超氧化物歧化酶和过氧化氢酶活性 | 第18-19页 |
| 1.4.2.3 炎症组织中丙二醛(MDA)含量 | 第19页 |
| 1.4.2.4 炎症组织中蛋白含量 | 第19页 |
| 1.5 微生物简介 | 第19-24页 |
| 1.5.1 常见微生物简介 | 第19-22页 |
| 1.5.1.1 金黄色葡萄球菌 | 第20-21页 |
| 1.5.1.2 大肠杆菌 | 第21页 |
| 1.5.1.3 沙门氏菌 | 第21-22页 |
| 1.5.2 常见抑菌活性方法 | 第22-24页 |
| 1.5.2.1 滤纸片法 | 第22-23页 |
| 1.5.2.2 平板打孔法 | 第23页 |
| 1.5.2.3 牛津杯法 | 第23页 |
| 1.5.2.4 试管二倍梯度稀释法 | 第23-24页 |
| 1.6 生物活性肽合成 | 第24页 |
| 1.7 课题研究的来源、目的及主要内容和创新性 | 第24-27页 |
| 1.7.1 课题研究的来源和目的 | 第24-25页 |
| 1.7.2 课题研究的创新性 | 第25-27页 |
| 第二章 材料与方法 | 第27-45页 |
| 2.1 实验仪器设备及试剂 | 第27-28页 |
| 2.1.1 实验仪器设备表 | 第27-28页 |
| 2.2 实验材料及试剂 | 第28-31页 |
| 2.2.1 实验材料及动物 | 第28-29页 |
| 2.2.2 实验试剂及药品 | 第29-30页 |
| 2.2.3 实验所需试剂的配制 | 第30-31页 |
| 2.2.3.1 藻粕酶解及细菌培养过程所需试剂溶液配制 | 第30-31页 |
| 2.2.3.2 动物炎症实验过程中所需试剂溶液配制 | 第31页 |
| 2.3 实验方法 | 第31-44页 |
| 2.3.1 微藻藻粕肽的制备及成分分析 | 第31-34页 |
| 2.3.1.1 微藻藻粕肽制备酶用量的确定 | 第31-32页 |
| 2.3.1.2 微藻藻粕肽制备酶解时间的确定 | 第32-33页 |
| 2.3.1.3 微藻藻粕肽LC-MS质谱分析 | 第33-34页 |
| 2.3.1.4 微藻藻粕肽蛋白含量测定 | 第34页 |
| 2.3.2 微藻酶解肽的抗炎活性及机制初步研究 | 第34-40页 |
| 2.3.2.1 酶解肽对二甲苯致小鼠耳廓肿胀的影响 | 第34-35页 |
| 2.3.2.2 酶解肽对角叉菜胶致小鼠足肿胀的影响 | 第35-36页 |
| 2.3.2.3 酶解肽对炎症组织渗出液中PGE2含量的影响 | 第36页 |
| 2.3.2.4 酶解肽对炎症组织渗出液中SOD含量的影响 | 第36-38页 |
| 2.3.2.5 酶解肽对炎症组织渗出液中MDA含量的影响 | 第38-39页 |
| 2.3.2.6 酶解肽对炎症组织渗出液中蛋白含量的影响 | 第39-40页 |
| 2.3.3 微藻酶解肽的抑菌活性 | 第40-42页 |
| 2.3.3.1 酶解肽对金黄色葡萄球菌的抑菌活性测试 | 第41-42页 |
| 2.3.3.2 酶解肽对大肠杆菌的抑菌活性测试 | 第42页 |
| 2.3.3.3 酶解肽对沙门氏菌的抑菌活性测试 | 第42页 |
| 2.3.4 藻酶解肽中活性成分预测 | 第42-44页 |
| 2.3.4.1 微藻酶解肽中活性肽序列预测 | 第42-43页 |
| 2.3.4.2 合成预测有活性功能肽 | 第43-44页 |
| 2.4 实验流程表 | 第44-45页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第45-71页 |
| 3.1 微藻藻粕肽的制备及活性分析结果 | 第45-49页 |
| 3.1.1 藻粕肽制备酶用量的结果与分析 | 第45-46页 |
| 3.1.2 藻粕肽制备酶解时间的结果与分析 | 第46页 |
| 3.1.3 微藻酶解前后产物对比 | 第46-47页 |
| 3.1.4 藻粕肽LC-MS质谱结果分析 | 第47-48页 |
| 3.1.5 酶解藻粕肽中蛋白浓度测定结果分析 | 第48-49页 |
| 3.2 微藻酶解肽的抗炎活性及机制的初步研究结果分析 | 第49-57页 |
| 3.2.1 酶解肽对二甲苯致炎小鼠耳廓肿胀的结果分析 | 第49-50页 |
| 3.2.2 酶解肽对角叉菜胶致小鼠右后足肿胀的结果分析 | 第50-53页 |
| 3.2.3 酶解肽对炎症组织渗出液中PGE2含量的影响 | 第53页 |
| 3.2.4 酶解肽对炎症组织中SOD含量的影响 | 第53-55页 |
| 3.2.5 酶解肽对炎症组织中MDA含量的影响 | 第55-56页 |
| 3.2.6 酶解肽对炎症组织渗出液中蛋白含量的影响 | 第56-57页 |
| 3.3 微藻酶解肽的抑菌活性研究结果分析 | 第57-69页 |
| 3.3.1 酶解肽对金黄色葡萄球菌抑菌活性结果分析 | 第57-60页 |
| 3.3.2 酶解肽对大肠杆菌抑菌活性结果分析 | 第60-64页 |
| 3.3.3 酶解肽对沙门氏菌抑菌活性结果分析 | 第64-69页 |
| 3.4 微藻酶解肽中活性成分预测结果讨论 | 第69-71页 |
| 3.4.1 微藻酶解肽中活性肽序列预测结果 | 第69页 |
| 3.4.2 合成预测有活性的功能肽结果 | 第69-71页 |
| 主要结论与展望 | 第71-74页 |
| 结论 | 第71-73页 |
| 展望 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-80页 |
| 致谢 | 第80-81页 |
| 附录1 | 第81-88页 |
| 在学期间已发表和录用的论文 | 第88-89页 |
| 个人简历 | 第89页 |
