前言 | 第4-5页 |
中文摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
英文缩略词索引 | 第9-13页 |
第1章 文献综述 | 第13-20页 |
1.1 细胞衰老 | 第13-14页 |
1.1.1 细胞衰老类型 | 第13-14页 |
1.1.2 细胞衰老的特征 | 第14页 |
1.2 细胞衰老的常用检测指标 | 第14-16页 |
1.3 干细胞衰老 | 第16页 |
1.4 烟酰胺磷酸核糖转移酶 | 第16-19页 |
1.4.1 Nampt概述 | 第16-17页 |
1.4.2 Nampt与年龄相关性疾病 | 第17-18页 |
1.4.3 Nampt-NAD+-Sirt1哺乳动物衰老调控网络 | 第18-19页 |
1.5 研究意义 | 第19-20页 |
第2章 实验研究 | 第20-47页 |
第一节 老龄化大鼠MSCs的生物学特性 | 第20-26页 |
1.实验材料 | 第20-21页 |
1.1 主要设备与器材 | 第20页 |
1.2 主要试剂 | 第20-21页 |
1.3 实验动物 | 第21页 |
1.4 主要液体配制 | 第21页 |
2.实验方法 | 第21-23页 |
2.1 细胞培养 | 第21-22页 |
2.2 自然衰老状态下MSCs的生物学特性 | 第22-23页 |
2.3 统计学分析 | 第23页 |
3 实验结果 | 第23-26页 |
3.1 MSCs的分离与培养 | 第23-24页 |
3.2 老龄化大鼠MSCs的形态学特点 | 第24-25页 |
3.3 自然衰老对MSCs生长及增殖能力的影响 | 第25页 |
3.4 自然衰老状态下MSCs细胞周期的变化 | 第25-26页 |
第2节 老龄化大鼠MSCs细胞衰老的发生 | 第26-40页 |
1.实验材料 | 第26-29页 |
1.1 主要仪器设备与器材 | 第26-27页 |
1.2 主要试剂 | 第27-29页 |
2.实验方法 | 第29-36页 |
2.1 MSCs细胞衰老的检测 | 第29-36页 |
2.2 统计学分析 | 第36页 |
3 实验结果 | 第36-40页 |
3.1 自然衰老状态下MSCs细胞衰老的检测 | 第36页 |
3.2 MSCs细胞凋亡的检测 | 第36-37页 |
3.3 自然衰老状态下MSCs内氧化与抗氧化水平的测定 | 第37-38页 |
3.4 自然衰老状态下MSCs内DNA损伤情况的检测 | 第38-39页 |
3.5 自然衰老对MSCs端粒酶活性的影响 | 第39-40页 |
3.6 MSCs中衰老相关因子pl6~(INK4A)、p21~(WAF1/ CIP1)的表达 | 第40页 |
第3节Nampt在老龄化大鼠MSCs中的表达及意义 | 第40-47页 |
1 实验材料 | 第40-41页 |
2 实验方法 | 第41-43页 |
2.1 Nampt在老龄化大鼠MSCs中的表达 | 第41-42页 |
2.2 老龄化大鼠MSCs中Sirt1的表达 | 第42页 |
2.3 老龄化大鼠MSCs中NAD+含量的检测 | 第42页 |
2.4 老龄化大鼠 MSCs中NAD+含量的检测 | 第42-43页 |
2.5 统计学分析 | 第43页 |
3 实验结果 | 第43-47页 |
3.1 自然衰老对MSCs中Nampt表达的影响 | 第43-44页 |
3.2 自然衰老对MSCs中Sirt1表达的影响 | 第44-45页 |
3.3 自然衰老对MSCs中NAD+含量的影响 | 第45-46页 |
3.4 自然衰老对 MSCs 细胞内 NAD+含量的影响 | 第46-47页 |
第3章 讨论 | 第47-52页 |
3.1 自然衰老状态下MSCS的生物学特性 | 第47-48页 |
3.2 老龄化大鼠MSCS细胞衰老的发生 | 第48-49页 |
3.3 Nampt在老龄化大鼠MSCS衰老中的表达及意义 | 第49-52页 |
第4章 结论 | 第52-53页 |
参考文献 | 第53-62页 |
作者简介及科研成果 | 第62-63页 |
致谢 | 第63页 |