摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-8页 |
英文缩略词表 | 第14-15页 |
1 前言 | 第15-17页 |
2 材料与方法 | 第17-36页 |
2.1 实验材料 | 第17-19页 |
2.1.1 主要试剂的配制 | 第18-19页 |
2.1.2 主要仪器与设备 | 第19页 |
2.2 实验方法 | 第19-36页 |
2.2.1 实验动物分组、模型建立及标本的收集 | 第19-21页 |
2.2.2 大鼠体重、睾丸和附睾脏器系数的分析 | 第21页 |
2.2.3 精液质量参数的测定 | 第21页 |
2.2.4 大鼠睾丸氟含量的测定 | 第21-22页 |
2.2.5 酶联免疫吸附测定(ELISA)法检测血清睾酮含量 | 第22-23页 |
2.2.6 大鼠血清氧化应激生化指标的检测 | 第23-25页 |
2.2.7 睾丸组织病理形态的观察 | 第25-26页 |
2.2.8 酶联免疫吸附(ELISA)法测定 8-OHdG含量 | 第26-27页 |
2.2.9 免疫组织化学法测定睾丸中 8-OHdG的表达情况 | 第27-29页 |
2.2.10 线性相关分析氧化应激和DNA损伤之间的相关性 | 第29页 |
2.2.11 荧光定量PCR法检测大鼠睾丸Nrf2及其下游基因表达情况 | 第29-32页 |
2.2.12 蛋白质印迹法方法检测检测睾丸Nrf2及其下游蛋白表达 | 第32-35页 |
2.2.13 统计学处理 | 第35-36页 |
3 结果 | 第36-60页 |
3.1 不同组别大鼠体重和主要脏器系数的比较 | 第36页 |
3.2 不同组别大鼠精液质量参数的比较 | 第36-37页 |
3.3 不同组别大鼠睾丸氟含量的比较 | 第37-38页 |
3.4 不同组别大鼠血清睾酮含量的比较 | 第38-39页 |
3.5 不同组别大鼠血清氧化应激相关生化指标的比较 | 第39-40页 |
3.6 大鼠睾丸组织病理学形态评价 | 第40-41页 |
3.7 ELISA法测定 8-OHdG含量的结果 | 第41-42页 |
3.8 不同组别大鼠睾丸 8-OHdG免疫组织化学表达定位和水平 | 第42-46页 |
3.9 氧化应激和DNA损伤的线性相关分析结果 | 第46-48页 |
3.10 大鼠睾丸Nrf2及其下游基因的mRNA表达情况 | 第48-54页 |
3.10.1 聚合酶链式反应(PCR)的电泳结果 | 第48-50页 |
3.10.2 荧光定量PCR结果 | 第50-54页 |
3.11 大鼠睾丸Nrf2及其下游NQO1和HO-1 的蛋白表达情况 | 第54-60页 |
3.11.1 不同组别大鼠睾丸Nrf2蛋白表达结果 | 第54-57页 |
3.11.2 不同组别大鼠睾丸NQO1蛋白和HO-1 蛋白表达结果 | 第57-60页 |
4 讨论 | 第60-67页 |
4.1 氟化物暴露对雄性生殖系统的危害 | 第60-61页 |
4.2 氟染毒通过氧化应激机制引起DNA损伤和生殖损伤 | 第61页 |
4.3 Nrf2/ARE信号通路在氟染毒致雄性生殖损伤中的作用 | 第61-63页 |
4.4 NAC降低了氟化物诱导的氧化性DNA损伤而保护雄性生殖系统 | 第63-64页 |
4.5 NAC对氟染毒大鼠睾丸Nrf2/ARE信号通路的影响 | 第64-65页 |
4.6 本研究的优点和局限性 | 第65-67页 |
5 结论 | 第67-68页 |
参考文献 | 第68-73页 |
综述 Nrf2-ARE通路介导的抗氧化细胞保护作用研究进展 | 第73-87页 |
1 Nrf2/ARE信号通路的分子基础 | 第73-74页 |
2 Nrf2/ARE信号通路的作用机制 | 第74-76页 |
3 氧化应激所引起的机体损伤 | 第76页 |
4 Nrf2/ARE信号通路的抗氧化保护作用 | 第76-80页 |
4.1 Nrf2-ARE信号通路的抗炎症作用 | 第76-77页 |
4.2 Nrf2-ARE信号通路的抗缺血再灌注损伤作用 | 第77页 |
4.3 Nrf2-ARE信号通路的抗凋亡作用 | 第77-78页 |
4.4 Nrf2-ARE信号通路与肿瘤的关系 | 第78页 |
4.5 Nrf2-ARE信号通路的神经保护作用 | 第78-79页 |
4.6 Nrf2-ARE信号通路的抗动脉粥样硬化的心血管保护作用 | 第79-80页 |
4.7 Nrf2-ARE信号通路的抗糖尿病作用 | 第80页 |
5 Nrf2-ARE信号通路的激活剂和抑制剂 | 第80-81页 |
6 小结 | 第81-82页 |
参考文献 | 第82-87页 |
个人简历及学术论文发表情况 | 第87-88页 |
致谢 | 第88页 |