摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-9页 |
第一章 绪论 | 第17-31页 |
1.1 引言 | 第17-28页 |
1.1.1 研究背景 | 第17-18页 |
1.1.2 国内外研究现状及评述 | 第18-28页 |
1.2 研究目标和主要研究内容 | 第28-30页 |
1.2.1 关键的科学问题与研究目标 | 第28页 |
1.2.2 主要研究内容 | 第28-30页 |
1.3 研究技术路线 | 第30-31页 |
第二章 木材DNA提取方法建立 | 第31-50页 |
2.1 材料和方法 | 第32-37页 |
2.1.1 样品制备 | 第32页 |
2.1.2 DNA提取 | 第32-34页 |
2.1.3 DNA定量检测 | 第34-35页 |
2.1.4 PCR扩增 | 第35-36页 |
2.1.5 组织化学分析 | 第36页 |
2.1.6 数理统计 | 第36-37页 |
2.2 结果与讨论 | 第37-49页 |
2.2.1 木材DNA提取方法优化 | 第37-38页 |
2.2.2 木材DNA提取 | 第38-42页 |
2.2.3 PCR扩增 | 第42-45页 |
2.2.4 改进CTAB法与改进Qiagen试剂盒法比较 | 第45-46页 |
2.2.5 木材组织细胞核和造粉体分布 | 第46-49页 |
2.3 小结 | 第49-50页 |
第三章 干燥处理木材的DNA条形码识别 | 第50-74页 |
3.1 材料与方法 | 第50-55页 |
3.1.1 实验材料 | 第50-51页 |
3.1.2 光学显微分析 | 第51页 |
3.1.3 木粉制备 | 第51-52页 |
3.1.4 DNA提取 | 第52页 |
3.1.5 DNA定量数理统计 | 第52页 |
3.1.6 引物设计 | 第52页 |
3.1.7 PCR扩增 | 第52-53页 |
3.1.8 PCR产物的纯化、克隆、测序 | 第53-54页 |
3.1.9 序列比对及系统进化树构建 | 第54-55页 |
3.2 结果与讨论 | 第55-72页 |
3.2.1 白木香属木材构造特征 | 第55-57页 |
3.2.2 DNA提取与PCR扩增 | 第57-61页 |
3.2.3 序列比对与系统进化分析 | 第61-71页 |
3.2.4 DNA条形码的筛选与评价 | 第71-72页 |
3.3 小结 | 第72-74页 |
第四章 长期存储木材的DNA条形码识别 | 第74-91页 |
4.1 材料与方法 | 第74-78页 |
4.1.1 实验材料 | 第74-75页 |
4.1.2 实验方法 | 第75-78页 |
4.2 结果与讨论 | 第78-89页 |
4.2.1 胡杨木材构造特征 | 第78-79页 |
4.2.2 长期存储及考古胡杨木材DNA定量分析 | 第79-80页 |
4.2.3 PCR扩增 | 第80-82页 |
4.2.4 序列比对 | 第82-85页 |
4.2.5 系统进化树构建 | 第85-89页 |
4.3 小结 | 第89-91页 |
第五章 濒危黄檀属木材的DNA条形码识别 | 第91-113页 |
5.1 材料与方法 | 第91-95页 |
5.1.1 实验材料 | 第91-94页 |
5.1.2 实验方法 | 第94-95页 |
5.2 结果与讨论 | 第95-111页 |
5.2.1 黄檀属木材构造特征 | 第95-99页 |
5.2.2 DNA提取与PCR扩增 | 第99-102页 |
5.2.3 序列比对与系统进化分析 | 第102-110页 |
5.2.4 DNA条形码的筛选与评价 | 第110-111页 |
5.3 小结 | 第111-113页 |
第六章 结论与讨论 | 第113-118页 |
6.1 结论 | 第113-116页 |
6.1.1 构建木材DNA提取技术体系 | 第113-114页 |
6.1.2 干燥处理对木材DNA的影响 | 第114-115页 |
6.1.3 存储时间对木材DNA的影响 | 第115页 |
6.1.4 优选适用于木材识别的DNA条形码 | 第115-116页 |
6.1.5 基于系统进化树实现濒危木材“种”的准确识别 | 第116页 |
6.2 创新点 | 第116页 |
6.3 展望与建议 | 第116-118页 |
参考文献 | 第118-128页 |
在读期间的学术研究 | 第128-130页 |
致谢 | 第130页 |