| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 缩略词表 | 第10-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-21页 |
| 1 间充质干细胞的生物学特性 | 第13-19页 |
| 1.1 间充质干细胞的分布及来源 | 第13-14页 |
| 1.2 间充质干细胞的生物学特性及鉴定 | 第14-16页 |
| 1.3 间充质干细胞的免疫学特性 | 第16-17页 |
| 1.4 间充质干细胞的应用 | 第17页 |
| 1.5 人脐带间充质干细胞概述 | 第17-19页 |
| 2 维生素A的化学特性及对细胞增殖的影响 | 第19页 |
| 3 研究目的及意义 | 第19-21页 |
| 第二章 人脐带间充质干细胞的分离培养及初步鉴定 | 第21-30页 |
| 1 试验材料 | 第21-22页 |
| 1.1 试验样本 | 第21页 |
| 1.2 主要仪器与设备 | 第21页 |
| 1.3 主要试剂 | 第21-22页 |
| 1.4 主要试剂的配制 | 第22页 |
| 2 试验方法 | 第22-25页 |
| 2.1 样品的采集与处理 | 第22页 |
| 2.2 样品组织形态学观察 | 第22-23页 |
| 2.3 酶消化法分离脐带细胞 | 第23页 |
| 2.4 HUCMSC生长曲线的绘制 | 第23-24页 |
| 2.5 HUCMSC的冻存与复苏 | 第24页 |
| 2.6 免疫组化检测HUCMSC标记基因及干细胞标记基因的表达 | 第24-25页 |
| 3 结果 | 第25-28页 |
| 3.1 人脐带组织形态学观察 | 第25页 |
| 3.2 不同组合消化酶及时间对HUCMSC分离的影响 | 第25-26页 |
| 3.3 HUCMSC形态观察 | 第26页 |
| 3.4 HUCMSC生长曲线测定 | 第26-27页 |
| 3.5 HUCMSC复苏后细胞活率 | 第27页 |
| 3.6 HUCMSC标志基因免疫组化分析 | 第27-28页 |
| 4 讨论 | 第28-30页 |
| 第三章 维生素A对人脐带间充质干细胞生长状况的影响 | 第30-42页 |
| 1 试验材料 | 第30-31页 |
| 1.1 试验样本 | 第30页 |
| 1.2 主要仪器与设备 | 第30页 |
| 1.3 主要试剂 | 第30-31页 |
| 1.4 主要试剂配制 | 第31页 |
| 2 试验方法 | 第31-34页 |
| 2.1 MTT法检测HUCMSC的增殖状况 | 第31页 |
| 2.2 HUCMSC标志基因免疫组化分折 | 第31页 |
| 2.3 HUCMSC相关基因的反转录聚合酶链式反应(RT-PCR)检测 | 第31-34页 |
| 2.4 数据统计 | 第34页 |
| 3 结果 | 第34-39页 |
| 3.1 维生素A对HUCMSC体外增殖的影响 | 第34-37页 |
| 3.2 添加维生素A连续培养HUCMSC 20代后标记基因的检测 | 第37-38页 |
| 3.3 干细胞相关基因和HUCMSC标记基因在培养中表达的变化 | 第38-39页 |
| 4 讨论 | 第39-42页 |
| 第四章 维生素A对人脐带间充质干细胞分泌相关细胞因子的影响 | 第42-51页 |
| 1 试验材料 | 第42-43页 |
| 1.1 试验样本 | 第42页 |
| 1.2 主要仪器与设备 | 第42-43页 |
| 1.3 主要试剂 | 第43页 |
| 1.4 主要试剂的配制 | 第43页 |
| 2 试验方法 | 第43-45页 |
| 2.1 RT-PCR检测HUCMSC分泌的细胞因子 | 第43-44页 |
| 2.2 ELISA检测HUCMSC分泌的细胞因子 | 第44-45页 |
| 3 结果 | 第45-49页 |
| 3.1 HUCMSC分泌的细胞因子的RT-PCR检测 | 第45-46页 |
| 3.2 HUCMSC分泌的细胞因子的ELISA检测 | 第46-49页 |
| 4 讨论 | 第49-51页 |
| 第五章 结论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
| 发表文章 | 第65页 |
