| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第一章 引言 | 第13-24页 |
| 1.1 枇杷叶的概况 | 第13页 |
| 1.2 枇杷叶的化学成分研究 | 第13-16页 |
| 1.2.1 挥发油 | 第13-14页 |
| 1.2.2 三萜酸类 | 第14页 |
| 1.2.3 倍半萜类 | 第14-15页 |
| 1.2.4 黄酮类 | 第15-16页 |
| 1.3 三萜酸研究现状 | 第16-22页 |
| 1.3.1 三萜酸的提取工艺研究 | 第16-17页 |
| 1.3.1.1 溶剂提取 | 第16-17页 |
| 1.3.1.2 超声辅助提取 | 第17页 |
| 1.3.1.3 微波辅助提取 | 第17页 |
| 1.3.1.4 超临界CO_2萃取 | 第17页 |
| 1.3.2 三萜酸的分离纯化工艺研究 | 第17-19页 |
| 1.3.2.1 大孔吸附树脂法 | 第18页 |
| 1.3.2.2 重结晶法 | 第18页 |
| 1.3.2.3 薄层层析法 | 第18-19页 |
| 1.3.2.4 高速逆流色谱 | 第19页 |
| 1.3.3 三萜酸的检测方法研究 | 第19-20页 |
| 1.3.3.1 分光光度法 | 第19页 |
| 1.3.3.2 高效液相色谱法 | 第19-20页 |
| 1.3.3.3 毛细管电泳法 | 第20页 |
| 1.3.4 三萜酸的生物活性研究 | 第20-22页 |
| 1.3.4.1 抗炎作用 | 第20页 |
| 1.3.4.2 抗氧化作用 | 第20-21页 |
| 1.3.4.3 抗癌作用 | 第21页 |
| 1.3.4.4 降血糖作用 | 第21页 |
| 1.3.4.5 其他作用 | 第21-22页 |
| 1.4 本课题的立题背景、意义和主要研究内容 | 第22-24页 |
| 1.4.1 立题背景和研究意义 | 第22页 |
| 1.4.2 主要研究内容 | 第22-24页 |
| 第二章 高效液相色谱法测定枇杷叶中科罗索酸含量 | 第24-30页 |
| 2.1 实验用品 | 第24页 |
| 2.1.1 实验材料和药品 | 第24页 |
| 2.1.2 实验仪器设备 | 第24页 |
| 2.2 实验方法 | 第24-25页 |
| 2.2.1 色谱条件 | 第24-25页 |
| 2.2.2 标准品溶液制备 | 第25页 |
| 2.2.3 枇杷叶样品制备 | 第25页 |
| 2.3 结果与分析 | 第25-29页 |
| 2.3.1 流动相的选择 | 第25-26页 |
| 2.3.2 线性范围 | 第26页 |
| 2.3.3 检测限 | 第26-27页 |
| 2.3.4 重复性 | 第27页 |
| 2.3.5 精密度 | 第27页 |
| 2.3.6 稳定性 | 第27-28页 |
| 2.3.7 回收率 | 第28页 |
| 2.3.8 样品含量测定 | 第28-29页 |
| 2.4 小结 | 第29-30页 |
| 第三章 枇杷叶中科罗索酸的提取工艺研究 | 第30-39页 |
| 3.1 实验用品 | 第30页 |
| 3.1.1 实验材料和药品 | 第30页 |
| 3.1.2 实验仪器设备 | 第30页 |
| 3.2 实验方法 | 第30-32页 |
| 3.2.1 色谱条件 | 第30-31页 |
| 3.2.2 单因素实验 | 第31页 |
| 3.2.3 正交试验 | 第31-32页 |
| 3.2.4 验证实验 | 第32页 |
| 3.2.5 统计分析 | 第32页 |
| 3.3 结果与分析 | 第32-37页 |
| 3.3.1 超声提取温度对科罗索酸得率的影响 | 第32-33页 |
| 3.3.2 微波提取功率对科罗索酸得率的影响 | 第33页 |
| 3.3.3 提取时间对科罗索酸得率的影响 | 第33-34页 |
| 3.3.4 乙醇浓度对科罗索酸得率的影响 | 第34-35页 |
| 3.3.5 料液比对科罗索酸得率的影响 | 第35页 |
| 3.3.6 超声辅助提取正交实验 | 第35-36页 |
| 3.3.7 微波辅助提取正交实验 | 第36-37页 |
| 3.3.8 验证实验 | 第37页 |
| 3.4 讨论 | 第37-38页 |
| 3.5 小结 | 第38-39页 |
| 第四章 枇杷叶中科罗索酸的分离纯化研究 | 第39-52页 |
| 4.1 实验用品 | 第39-40页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第39页 |
| 4.1.2 实验仪器设备 | 第39页 |
| 4.1.3 实验试剂 | 第39-40页 |
| 4.2 实验方法 | 第40-42页 |
| 4.2.1 科罗索酸粗提取液的制备 | 第40页 |
| 4.2.2 大孔树脂分离纯化科罗索酸 | 第40-41页 |
| 4.2.2.1 树脂预处理 | 第40页 |
| 4.2.2.2 不同树脂静态吸附与解吸实验 | 第40页 |
| 4.2.2.3 最优大孔树脂的静态吸附实验 | 第40-41页 |
| 4.2.2.4 不同pH值料液浓度对最优树脂吸附效果的影响 | 第41页 |
| 4.2.2.5 最优树脂的动态吸附及洗脱实验 | 第41页 |
| 4.2.3 硅胶柱层析分离纯化科罗索酸 | 第41-42页 |
| 4.2.3.1 洗脱溶剂系统的选择 | 第41页 |
| 4.2.3.2 硅胶柱层析工艺 | 第41-42页 |
| 4.2.4 重结晶 | 第42页 |
| 4.3 实验结果 | 第42-50页 |
| 4.3.1 大孔树脂分离纯化科罗索酸 | 第42-48页 |
| 4.3.1.1 不同树脂静态吸附与解吸结果 | 第42-43页 |
| 4.3.1.2 HZ802树脂的静态吸附动力学曲线 | 第43页 |
| 4.3.1.3 不同pH值料液对最优树脂吸附效果的影响 | 第43-44页 |
| 4.3.1.4 上样质量浓度对科罗索酸吸附效果的影响 | 第44页 |
| 4.3.1.5 上样体积对科罗索酸吸附效果的影响 | 第44-45页 |
| 4.3.1.6 上样流速对科罗索酸吸附效果的影响 | 第45-46页 |
| 4.3.1.7 洗脱液乙醇浓度对科罗索酸洗脱效果的影响 | 第46页 |
| 4.3.1.8 洗脱流速对科罗索酸洗脱效果的影响 | 第46-47页 |
| 4.3.1.9 洗脱体积对科罗索酸洗脱效果的影响 | 第47-48页 |
| 4.3.2 硅胶柱层析分离纯化科罗索酸 | 第48-49页 |
| 4.3.2.1 洗脱溶剂系统的选择 | 第48页 |
| 4.3.2.2 洗脱剂对硅胶柱层析的影响 | 第48-49页 |
| 4.3.2.3 上样量对硅胶柱层析的影响 | 第49页 |
| 4.3.3 重结晶 | 第49-50页 |
| 4.3.4 HPLC图谱 | 第50页 |
| 4.4 小结 | 第50-52页 |
| 第五章 枇杷叶中含科罗索酸提取物的降血糖活性研究 | 第52-60页 |
| 5.1 实验用品 | 第52-53页 |
| 5.1.1 实验材料 | 第52页 |
| 5.1.2 实验仪器设备 | 第52页 |
| 5.1.3 实验试剂 | 第52-53页 |
| 5.2 实验方法 | 第53-54页 |
| 5.2.1 枇杷叶含科罗索酸提取物的制备 | 第53页 |
| 5.2.2 糖尿病小鼠模型的建立和分组 | 第53页 |
| 5.2.3 枇杷叶含科罗索酸提取物对小鼠体重、空腹血糖浓度的影响 | 第53页 |
| 5.2.4 小鼠口服耐糖量实验 | 第53-54页 |
| 5.2.5 枇杷叶含科罗索酸提取物对小鼠血清胰岛素的影响 | 第54页 |
| 5.2.6 枇杷叶含科罗索酸提取物对小鼠血脂指标的影响 | 第54页 |
| 5.2.7 枇杷叶含科罗索酸提取物对小鼠脏器指数的影响 | 第54页 |
| 5.2.8 统计学方法 | 第54页 |
| 5.3 实验结果与分析 | 第54-59页 |
| 5.3.1 枇杷叶含科罗索酸提取物对小鼠生活状态的影响 | 第54-55页 |
| 5.3.2 枇杷叶含科罗索酸提取物对小鼠体重的影响 | 第55页 |
| 5.3.3 枇杷叶含科罗索酸提取物对小鼠空腹血糖浓度的影响 | 第55-56页 |
| 5.3.4 枇杷叶含科罗索酸提取物对小鼠口服糖耐量的影响 | 第56-57页 |
| 5.3.5 枇杷叶含科罗索酸提取物对小鼠血清胰岛素的影响 | 第57页 |
| 5.3.6 枇杷叶含科罗索酸提取物对小鼠血脂指标的影响 | 第57-58页 |
| 5.3.7 枇杷叶含科罗索酸提取物对小鼠脏器指数的影响 | 第58-59页 |
| 5.4 讨论 | 第59页 |
| 5.5 小结 | 第59-60页 |
| 第六章 结论与展望 | 第60-62页 |
| 6.1 结论 | 第60-61页 |
| 6.2 展望 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-68页 |
| 致谢 | 第68页 |
