| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 1 前言 | 第12-21页 |
| 1.1 副溶血弧菌特性及其危害 | 第12-15页 |
| 1.1.1 副溶血弧菌生物学特性 | 第12页 |
| 1.1.2 副溶血弧菌的危害影响 | 第12-13页 |
| 1.1.3 副溶血弧菌主要危害因子 | 第13-15页 |
| 1.2 细菌菌群间的相互影响 | 第15-17页 |
| 1.2.1 菌群间相互影响现象 | 第15-16页 |
| 1.2.2 菌群间相互影响研究进展 | 第16-17页 |
| 1.3 细菌间的通讯与群体感应信号传导 | 第17-19页 |
| 1.3.1 群体感应概况 | 第17页 |
| 1.3.2 革兰氏阴性菌群体感应信号分子种类及检测方法 | 第17-19页 |
| 1.4 本研究目的意义、研究内容与创新点 | 第19-21页 |
| 1.4.1 研究目的与意义 | 第19页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第19-20页 |
| 1.4.3 创新之处 | 第20-21页 |
| 2 对虾优势腐败菌信号分子的产生及活性变化 | 第21-30页 |
| 2.1 材料和仪器 | 第21-23页 |
| 2.1.1 菌种及培养条件 | 第21-22页 |
| 2.1.2 材料与试剂 | 第22页 |
| 2.1.3 设备与仪器 | 第22-23页 |
| 2.2 试验方法 | 第23-24页 |
| 2.2.1 菌株培养方法 | 第23页 |
| 2.2.2 腐败菌上清粗体物的制备 | 第23页 |
| 2.2.3 平板划线法定性检测AHLs | 第23页 |
| 2.2.4 平板打孔法定性检测AHLs | 第23页 |
| 2.2.5 AHLs信号分子 β-半乳糖苷酶活性测定法 | 第23-24页 |
| 2.2.6 AI-2 信号分子的检测 | 第24页 |
| 2.2.7 特定腐败菌 48h动态生长密度及信号分子活性变化 | 第24页 |
| 2.2.8 数据处理与分析 | 第24页 |
| 2.3 结果与分析 | 第24-28页 |
| 2.3.1 平板划线法定性检测优势腐败菌AHLs生成情况 | 第24-25页 |
| 2.3.2 平板打孔法定性检测优势腐败菌AHLs生成情况 | 第25页 |
| 2.3.3 β-半乳糖苷酶活性法半定量检测对虾腐败菌AHLs的量 | 第25-26页 |
| 2.3.4 对虾腐败菌AI-2 信号分子的量 | 第26-27页 |
| 2.3.5 特定腐败菌动态生长及信号分子活性变化 | 第27-28页 |
| 2.4 讨论 | 第28-29页 |
| 2.5 小结 | 第29-30页 |
| 3 特定腐败菌对副溶血弧菌生长、生物被膜形成及信号分子生成的影响 | 第30-49页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第30-31页 |
| 3.1.1 菌种 | 第30-31页 |
| 3.1.2 试剂和材料 | 第31页 |
| 3.1.3 设备与仪器 | 第31页 |
| 3.2 方法 | 第31-33页 |
| 3.2.1 腐败菌上清粗体物的制备 | 第31页 |
| 3.2.2 生物被膜的定量检测方法 | 第31页 |
| 3.2.3 腐败菌胞体及其上清粗提物对VP生物被膜形成的影响 | 第31-32页 |
| 3.2.4 腐败菌上清粗提物对VP 48h动态生长密度及群体感应信号分子的影响 | 第32页 |
| 3.2.5 腐败菌上清粗提物添加量对VP动态生长密度及群体感应信号分子的影响 | 第32页 |
| 3.2.6 腐败菌上清粗提物在VP不同生长期添加对其生长密度及群体感应信号分子的影响 | 第32页 |
| 3.2.7 光学显微镜及扫描电镜观察VP生物被膜形成情况 | 第32-33页 |
| 3.2.8 数据处理与分析 | 第33页 |
| 3.3 结果与分析 | 第33-47页 |
| 3.3.1 腐败菌胞体对V P生物被膜形成的影响 | 第33-34页 |
| 3.3.2 腐败菌上清粗提物对VP生物被膜形成及生长的影响 | 第34-35页 |
| 3.3.3 腐败菌上清粗提物对VP生物被膜不同形成时间的影响 | 第35页 |
| 3.3.4 腐败菌上清粗提物对VP 48h生长密度、生物被膜及信号分子动态变化的影响 | 第35-43页 |
| 3.3.5 腐败菌上清粗提物添加量对VP动态生长密度及信号分子活性的影响32 | 第43-44页 |
| 3.3.6 腐败菌上清粗提物在VP不同生长期添加对其生长密度及信号分子活性的影响 | 第44-45页 |
| 3.3.7 显微镜分别观察两种腐败菌及其上清粗提物对VP生物被膜形成的影响 | 第45-47页 |
| 3.4 讨论 | 第47-48页 |
| 3.5 小结 | 第48-49页 |
| 4 特定腐败菌对副溶血弧菌溶血活性及tdh基因表达的影响 | 第49-63页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第49-50页 |
| 4.1.1 材料与试剂 | 第49-50页 |
| 4.1.2 仪器与设备 | 第50页 |
| 4.2 方法 | 第50-53页 |
| 4.2.1 血平板的制备 | 第50页 |
| 4.2.2 副溶血弧菌神奈川现象 | 第50页 |
| 4.2.3 兔血球溶血试验 | 第50页 |
| 4.2.4 溶血试验条件的确定 | 第50-51页 |
| 4.2.5 特定腐败菌胞体及上清粗提物对副溶血弧菌溶血活力的影响 | 第51页 |
| 4.2.6 平板计数法统计特定腐败菌胞体对副溶血弧菌菌体生长的影响 | 第51页 |
| 4.2.7 特定腐败菌上清粗提物不同添加量对副溶血弧菌溶血能力的影响 | 第51页 |
| 4.2.8 特定腐败菌上清粗提物对副溶血弧菌生长不同时期溶血能力的影响 | 第51页 |
| 4.2.9 荧光 PCR 检测副溶血弧菌 tdh 的表达 | 第51-52页 |
| 4.2.10 小鼠致病力试验 | 第52-53页 |
| 4.2.11 数据处理与分析 | 第53页 |
| 4.3 结果与分析 | 第53-61页 |
| 4.3.1 受试副溶血弧菌神奈川现象 | 第53页 |
| 4.3.2 溶血条件的确定 | 第53-54页 |
| 4.3.3 特定腐败菌胞体及上清粗提物对副溶血弧菌溶血力及菌体生长的影响 | 第54-57页 |
| 4.3.4 camtF上清粗提物不同添加量对副溶血弧菌溶血力的影响 | 第57-58页 |
| 4.3.5 特定腐败菌上清粗提物对不同生长期副溶血弧菌溶血力的影响 | 第58-59页 |
| 4.3.6 荧光PCR检测camtF胞体及提取物对副溶血弧菌tdh基因表达的影响 | 第59-60页 |
| 4.3.7 小鼠致病力试验 | 第60-61页 |
| 4.4 讨论 | 第61页 |
| 4.5 小结 | 第61-63页 |
| 5 总结与展望 | 第63-65页 |
| 5.1 总结 | 第63-64页 |
| 5.2 展望与不足之处 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-79页 |
| 致谢 | 第79-80页 |
| 作者简介 | 第80-81页 |
| 导师简介 | 第81页 |
