| 摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-26页 |
| 1.1 牛多杀性巴氏杆菌概述 | 第12-13页 |
| 1.1.1 牛多杀性巴氏杆菌病 | 第12页 |
| 1.1.2 牛多杀性巴氏杆菌致病机制 | 第12-13页 |
| 1.2 炎症机制 | 第13-20页 |
| 1.2.1 炎症反应 | 第13页 |
| 1.2.2 炎症反应的重要核心–IL-1β | 第13-15页 |
| 1.2.3 TNF-α | 第15页 |
| 1.2.4 炎性小体 | 第15-20页 |
| 1.3 NF-κB信号通路与炎症反应 | 第20-21页 |
| 1.4 MAPK信号通路与炎症反应 | 第21-22页 |
| 1.4.1 JNK信号通路 | 第21-22页 |
| 1.4.2 P38信号通路 | 第22页 |
| 1.5 Toll样受体与炎症反应 | 第22-24页 |
| 1.5.1 TLR2 | 第23-24页 |
| 1.5.2 TLR4 | 第24页 |
| 1.6 细胞吞噬作用对炎症信号通路的影响 | 第24-26页 |
| 第二章 引言 | 第26-30页 |
| 2.1 研究目的及意义 | 第26页 |
| 2.2 研究的主要内容 | 第26-28页 |
| 2.2.1 Pm A、Pm B诱导细胞的炎症反应 | 第26-27页 |
| 2.2.2 Pm A、Pm B诱导细胞炎症反应与Toll样受体的关系 | 第27页 |
| 2.2.3 Pm A、Pm B诱导细胞炎症与NF-κB、MAPK信号通路关系 | 第27页 |
| 2.2.4 Pm A、Pm B诱导细胞炎症反应与炎性小体的关系 | 第27页 |
| 2.2.5 NF-κB、MAPK信号通路与炎性小体 | 第27页 |
| 2.2.6 细胞吞噬作用与Pm A、Pm B诱导炎症信号通路的激活 | 第27-28页 |
| 2.3 技术路线 | 第28-30页 |
| 第三章 材料与方法 | 第30-38页 |
| 3.1 材料 | 第30-31页 |
| 3.1.1 菌株 | 第30页 |
| 3.1.2 细胞 | 第30页 |
| 3.1.3 主要试剂 | 第30-31页 |
| 3.1.4 主要仪器 | 第31页 |
| 3.2 方法 | 第31-38页 |
| 3.2.1 Pm A、Pm B的培养及PCR鉴定 | 第31-32页 |
| 3.2.2 小鼠巨噬细胞RAW264.7 的培养 | 第32-33页 |
| 3.2.3 样本的制备 | 第33页 |
| 3.2.4 提取小鼠巨噬细胞RAW264.7 总RNA | 第33页 |
| 3.2.5 c DNA的合成 | 第33-34页 |
| 3.2.6 SYBR Green I实时定量PCR | 第34页 |
| 3.2.7 ELISA的检测 | 第34页 |
| 3.2.8 Western Blot检测目的蛋白在巨噬细胞中的表达 | 第34-36页 |
| 3.2.9 数据分析 | 第36-38页 |
| 第四章 结果与分析 | 第38-60页 |
| 4.1 Pm A、Pm B的培养及PCR鉴定 | 第38页 |
| 4.2 q RT-PCR扩增曲线和熔解曲线 | 第38-40页 |
| 4.3 Pm A、Pm B诱导炎症反应 | 第40-45页 |
| 4.4 TLR2、TLR4介导炎症信号通路的激活 | 第45-48页 |
| 4.5 NF-κB、MAPK信号通路参与炎症信号通路的激活 | 第48-49页 |
| 4.6 炎性小体参与Pm A、Pm B诱导的炎症信号通路 | 第49-55页 |
| 4.6.1 炎性小体接头蛋白ASC的激活 | 第49-50页 |
| 4.6.2 Pm A、Pm B诱导炎症信号通路的激活依赖于Caspase-1 | 第50-51页 |
| 4.6.3 NLRP3、NLRP6参与Pm A、Pm B诱导的炎症反应 | 第51-55页 |
| 4.7 NF-κB、MAPK信号通路参与调控NLRP3、NLRP6炎性小体 | 第55-57页 |
| 4.8 细胞吞噬作用参与炎症信号通路的激活 | 第57-60页 |
| 第五章 讨论与结论 | 第60-66页 |
| 5.1 讨论 | 第60-64页 |
| 5.2 结论 | 第64-66页 |
| 参考文献 | 第66-76页 |
| 致谢 | 第76页 |
