| 致谢 | 第3-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第一章 引言 | 第17-39页 |
| 1.1 脑疾病研究的意义 | 第17-20页 |
| 1.1.1 癫痫发作及痫波脑内传播的神经环路研究的意义 | 第17-19页 |
| 1.1.2 癫痫相关的情绪异常的神经环路研究的意义 | 第19-20页 |
| 1.2 用于解析神经环路相关技术的发展概述 | 第20-27页 |
| 1.2.1 光遗传调控—信息的写入 | 第21-22页 |
| 1.2.2 电生理记录—信息的读取 | 第22-24页 |
| 1.2.3 信号处理-信息的解码 | 第24-27页 |
| 1.3 颞叶癫痫发作传播神经环路研究现状 | 第27-30页 |
| 1.4 颞叶癫痫及情绪相关的神经环路功能 | 第30-35页 |
| 1.5 临床意义与展望 | 第35页 |
| 1.6 本文的贡献 | 第35-37页 |
| 1.7 论文的组织 | 第37-39页 |
| 第二章 新型在体多功能光电极阵列的制备和应用 | 第39-59页 |
| 2.1 背景和意义 | 第39-40页 |
| 2.2 实验方法与材料 | 第40-48页 |
| 2.2.1 多通道电极制备 | 第40-41页 |
| 2.2.2 生物相容性材料沉积 | 第41-42页 |
| 2.2.3 动物饲养和手术 | 第42页 |
| 2.2.4 电生理记录相关过程 | 第42-43页 |
| 2.2.5 电生理信号处理 | 第43-46页 |
| 2.2.6 固定和免疫组化染色 | 第46-48页 |
| 2.3 研究结果 | 第48-58页 |
| 2.3.1 新型多功能在体电生理记录与分析技术 | 第48-55页 |
| 2.3.2 电极界面的生物活性材料修饰 | 第55-58页 |
| 2.4 实验结果讨论 | 第58-59页 |
| 第三章 痫波在海马-内嗅皮层结构中的传播环路解析 | 第59-85页 |
| 3.1 背景和意义 | 第59-61页 |
| 3.2 实验方法与材料 | 第61-64页 |
| 3.2.1 病毒注射 | 第61-62页 |
| 3.2.2 CTB的注射和表达 | 第62页 |
| 3.2.3 光纤头制作 | 第62页 |
| 3.2.4 埋植光纤 | 第62-63页 |
| 3.2.5 c-Fos染色样品准备 | 第63页 |
| 3.2.6 自由活动小鼠KA诱导-光刺激的行为测试 | 第63页 |
| 3.2.7 电生理信号处理 | 第63-64页 |
| 3.2.8 其他 | 第64页 |
| 3.3 实验结果 | 第64-82页 |
| 3.3.1 同步化增强在海马/内嗅皮层结构中的贡献 | 第64-68页 |
| 3.3.2 DGH兴奋性神经元主导了癫痫发作传播 | 第68-73页 |
| 3.3.3 精确解析痫波传播的海马-内嗅皮层环路 | 第73-75页 |
| 3.3.4 痫波传播环路的验证 | 第75-80页 |
| 3.3.5 杏仁核点燃癫痫模型上验证痫波主要传播环路 | 第80-82页 |
| 3.4 实验结果讨论 | 第82-85页 |
| 第四章 癫痫模型动物中癫痫发作间期先天恐惧信息处理异常的神经环路解析 | 第85-101页 |
| 4.1 背景和意义 | 第85-87页 |
| 4.2 实验材料与方法 | 第87-89页 |
| 4.2.1 捕食者恐惧行为测试 | 第87页 |
| 4.2.2 c-Fos染色样品准备 | 第87-88页 |
| 4.2.3 慢性癫痫模型构建 | 第88页 |
| 4.2.4 其他 | 第88-89页 |
| 4.3 实验结果 | 第89-99页 |
| 4.3.1 癫痫小鼠对捕食者的恐惧下降 | 第89-90页 |
| 4.3.2 c-Fos表达显示在捕食者恐惧测试中癫痫小鼠海马神经元活动异常 | 第90-92页 |
| 4.3.3 光调控激活背侧海马神经元降低小鼠对捕食者的恐惧 | 第92-93页 |
| 4.3.4 海马è下丘脑环路功能连接 | 第93-95页 |
| 4.3.5 局部场电位相关信号解析光调控dHPC捕食者恐惧的环路功能 | 第95-98页 |
| 4.3.6 癫痫模型动物中dHPC-Hy环路功能异常 | 第98-99页 |
| 4.4 实验结果讨论 | 第99-101页 |
| 第五章 结束语 | 第101-103页 |
| 5.1 本文工作总结 | 第101-102页 |
| 5.2 下一步研究方向 | 第102-103页 |
| 参考文献 | 第103-111页 |
| 附录 | 第111-130页 |
| 作者简介 | 第130-131页 |
