| 摘要 | 第3-4页 |
| ABSTRACT | 第4页 |
| 前言 | 第8-10页 |
| 第一章 绪论 | 第10-19页 |
| 1.1 脑胶质瘤的简介 | 第10页 |
| 1.2 脑胶质瘤重要分子标志物 | 第10-11页 |
| 1.2.1 IDH1基因突变 | 第10-11页 |
| 1.2.2 MGMT启动子甲基化 | 第11页 |
| 1.2.3 染色体lp/19q缺失 | 第11页 |
| 1.3 端粒酶逆转录酶基因简介 | 第11-12页 |
| 1.4 肿瘤中TERT基因的突变 | 第12-15页 |
| 1.4.1 TERT基因突变 | 第12-14页 |
| 1.4.2 TERT基因突的临床意义 | 第14-15页 |
| 1.5 肿瘤中TERT基因启动子区甲基化 | 第15-17页 |
| 1.5.1 DNA甲基化修饰及其研究意义 | 第15-16页 |
| 1.5.2 TERT基因的甲基化 | 第16-17页 |
| 1.6 论文研究内容与意义 | 第17-19页 |
| 第二章 脑胶质瘤样本处理 | 第19-23页 |
| 2.1 脑胶质瘤样本收集 | 第19页 |
| 2.2 肿瘤样本基因组DNA提取 | 第19-20页 |
| 2.2.1 实验材料、试剂与仪器 | 第19页 |
| 2.2.2 实验步骤 | 第19-20页 |
| 2.3 肿瘤样本总RNA提取 | 第20-21页 |
| 2.3.1 实验材料、试剂与仪器 | 第20-21页 |
| 2.3.2 实验步骤 | 第21页 |
| 2.4 实验结果 | 第21-22页 |
| 2.5 本章小结 | 第22-23页 |
| 第三章 脑胶质瘤样本TERT基因启动子区甲基化程度检测 | 第23-33页 |
| 3.1 焦磷酸测序技术定量检测TERT基因甲基化的实验原理 | 第23-24页 |
| 3.1.1 常用的甲基化检测方法 | 第23-24页 |
| 3.1.2 焦磷酸测序实验原理 | 第24页 |
| 3.2 焦磷酸测序技术定量检测TERT基因启动子区域甲基化的实验流程 | 第24-28页 |
| 3.2.1 实验材料、试剂与仪器 | 第24-25页 |
| 3.2.2 实验步骤 | 第25-28页 |
| 3.3 实验结果与数据分析 | 第28-32页 |
| 3.3.1 焦磷酸测序结果 | 第28-31页 |
| 3.3.2 实验数据分析 | 第31-32页 |
| 3.4 本章小结 | 第32-33页 |
| 第四章 脑胶质瘤样本TERT基因mRNA表达水平检测 | 第33-42页 |
| 4.1 qRT-PCR的原理 | 第33-34页 |
| 4.2 qRT-PCR技术检测脑胶质瘤样本TERT基因mRNA表达 | 第34-37页 |
| 4.2.1 实验材料、试剂与仪器 | 第34页 |
| 4.2.2 实验步骤 | 第34-37页 |
| 4.3 实验结果和分析 | 第37-40页 |
| 4.3.1 脑胶质瘤样本mRNA表达水平检测结果 | 第37-38页 |
| 4.3.2 实验数据分析 | 第38-40页 |
| 4.4 本章小结 | 第40-42页 |
| 第五章 脑胶质瘤样本TERT基因与IDH1基因突变检测 | 第42-50页 |
| 5.1 Sanger法检测TERT基因C228T,C250T突变 | 第42-44页 |
| 5.1.1 实验材料、试剂和仪器 | 第42页 |
| 5.1.2 实验步骤 | 第42-43页 |
| 5.1.3 实验结果及数据分析 | 第43-44页 |
| 5.2 焦磷酸测序检测脑胶质瘤样本IDH1基因R132H突变 | 第44-46页 |
| 5.2.1 实验材料、试剂和仪器 | 第44-45页 |
| 5.2.2 实验步骤 | 第45页 |
| 5.2.3 实验结果与数据分析 | 第45-46页 |
| 5.3 TERT基因甲基化、mRNA表达与突变的关系 | 第46-48页 |
| 5.3.1 IDH1基因突变与TERT基因甲基化程度、mRNA表达水平关系 | 第46-48页 |
| 5.3.2 TERT基因突变与其UTSS区甲基化程度、mRNA表达水平关系 | 第48页 |
| 5.4 本章小结 | 第48-50页 |
| 全文小结 | 第50-52页 |
| 参考文献 | 第52-60页 |
| 攻读硕士学位期间参加的主要科研项目 | 第60-61页 |
| 致谢 | 第61页 |
