| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 绪论 | 第12-14页 |
| 第一部分 文献综述与理论研究 | 第14-32页 |
| 1 UAN的中医学研究进展 | 第14-17页 |
| 1.1 UAN的病因病机 | 第14-15页 |
| 1.2 UAN的治法治则 | 第15-17页 |
| 2 UAN与NLRP 3(Nod-like receptor protein 3)炎性体相关性研究进展 | 第17-19页 |
| 2.1 NLRP3炎性体结构与功能 | 第17页 |
| 2.2 NLRP 3炎性体与痛风相关性 | 第17-18页 |
| 2.3 基于NLRP3炎性体的治疗 | 第18-19页 |
| 3 PI3K/AKT/mTOR通路与UAN研究进展 | 第19-22页 |
| 3.1 PI3K/AKT/mTOR通路结构与功能 | 第19-21页 |
| 3.2 PI3K/AKT/mTOR在肾组织中的表达 | 第21-22页 |
| 4 尿酸在体内的代谢 | 第22-25页 |
| 4.1 尿酸在肾脏的代谢 | 第22页 |
| 4.2 尿酸与尿酸转运子 | 第22-24页 |
| 4.3 肠道菌群与尿酸 | 第24-25页 |
| 5 清热利湿法治疗UAN的荟萃分析 | 第25-31页 |
| 5.1 资料与方法 | 第25-26页 |
| 5.2 结果 | 第26-31页 |
| 5.3 小结 | 第31页 |
| 6 萆薢除痹汤前期研究基础 | 第31页 |
| 7 提出假说 | 第31-32页 |
| 第二部分 实验研究 | 第32-80页 |
| 实验一 UAN动物模型的筛选 | 第32-41页 |
| 1 实验材料 | 第32-33页 |
| 1.1 实验动物 | 第32页 |
| 1.2 主要药品与试剂 | 第32页 |
| 1.3 主要实验仪器 | 第32-33页 |
| 2 实验方法 | 第33-34页 |
| 2.1 药品与试剂配制 | 第33页 |
| 2.2 动物分组与给药 | 第33页 |
| 2.3 观测指标与测定方法 | 第33页 |
| 2.4 肾脏病理检测 | 第33-34页 |
| 2.5 数据统计 | 第34页 |
| 3 实验结果 | 第34-40页 |
| 3.1 大鼠一般状态观察及死亡情况 | 第34页 |
| 3.2 大鼠肾脏质量观察 | 第34-35页 |
| 3.3 不同时间各组大鼠XO水平变化 | 第35-36页 |
| 3.4 不同时间各组大鼠BUA水平变化 | 第36-37页 |
| 3.5 不同时间各组大鼠血Cr水平变化 | 第37-38页 |
| 3.6 不同时间各组大鼠BUN水平变化 | 第38-39页 |
| 3.7 大鼠肾脏病理 | 第39-40页 |
| 4 小结 | 第40-41页 |
| 实验二 萆薢除痹汤降低UAN模型大鼠肾组织NLRP3炎性体作用 | 第41-63页 |
| 1 实验材料 | 第41-42页 |
| 1.1 实验动物 | 第41页 |
| 1.2 主要试剂及药物 | 第41页 |
| 1.3 实验器材 | 第41-42页 |
| 2 实验方法 | 第42-48页 |
| 2.1 药品溶液配制 | 第42页 |
| 2.2 动物分组与给药 | 第42页 |
| 2.3 一般生化检测(BUA、Cr、BUN) | 第42-43页 |
| 2.4 大鼠肾脏病理评分及NLRP3免疫组化 | 第43页 |
| 2.5 ELISA法测定SD大鼠血清IL-1β | 第43-44页 |
| 2.6 Western blot法检测SD大鼠肾组织NLRPP3、ASC、caspas-1 | 第44-46页 |
| 2.7 RT-PCR方法检测SD大鼠肾组织NLRPP3、ASC、caspas-1、IL-1β | 第46-48页 |
| 2.8 数据统计与分析 | 第48页 |
| 3 实验结果 | 第48-61页 |
| 3.1 萆薢除痹汤对UAN大鼠一般情况的影响 | 第48页 |
| 3.2 萆薢除痹汤对UAN大鼠血Cr、BUN水平的影响 | 第48-49页 |
| 3.3 萆薢除痹汤对UAN大鼠肾组织病理变化的影响 | 第49-52页 |
| 3.4 萆薢除痹汤对UAN大鼠血清UA水平的影响 | 第52-53页 |
| 3.5 萆薢除痹汤对UAN大鼠血清IL-1β的影响 | 第53-54页 |
| 3.6 萆薢除痹汤对UAN大鼠肾组织NLRP3、caspase-1、ASC蛋白表达的影响 | 第54-57页 |
| 3.7 萆薢除痹汤对UAN大鼠肾组织NLRP3、ASC、IL-1β、caspase-1 mRNA表达的影响 | 第57-61页 |
| 4 小结 | 第61-63页 |
| 实验三 萆薢除痹汤在NR8383细胞通过PI3K/AKT/mTOR调控NLRP3炎性体作用机制研究 | 第63-80页 |
| 1 实验材料 | 第63-64页 |
| 1.1 实验细胞 | 第63页 |
| 1.2 实验试剂及药物 | 第63页 |
| 1.3 实验仪器 | 第63-64页 |
| 1.4 溶液配制 | 第64页 |
| 2 实验方法 | 第64-70页 |
| 2.1 含药血清制备 | 第64页 |
| 2.2 细胞复苏 | 第64页 |
| 2.3 NR8383细胞的培养 | 第64-65页 |
| 2.4 细胞分组及给药 | 第65页 |
| 2.5 ELISA法检测IL-1β | 第65页 |
| 2.6 Western blot方法检测p-PI3K、p-AKT、p-mTOR、NLRP3、ASC、caspase-1 | 第65-68页 |
| 2.7 PCR法检测NLRP3、ASC、caspas-1、IL-1β mRNA | 第68-70页 |
| 2.8 数据统计与分析 | 第70页 |
| 3 实验结果 | 第70-79页 |
| 3.1 萆薢除痹汤对NR8383细胞上清液IL-1β表达的影响 | 第70-71页 |
| 3.2 萆薢除痹汤对NR8383细胞中p-PI3K、p-AKT、p-mTOR、NLRP3、ASC、caspase-1蛋白表达的影响 | 第71-76页 |
| 3.3 萆薢除痹汤对NR8383细胞中NLRP3、ASC、caspase-1、IL-1β mRNA表达的影响 | 第76-79页 |
| 4 小结 | 第79-80页 |
| 第三部分 讨论 | 第80-85页 |
| 1. UAN的中医病机分析 | 第80页 |
| 2. 萆薢除痹汤方药分析 | 第80-82页 |
| 3. UAN动物模型的选择 | 第82-83页 |
| 4. 萆薢除痹汤通过PI3K/AKT/mTOR通路调控NLRP3炎性体 | 第83-84页 |
| 5. 思考与展望 | 第84-85页 |
| 参考文献 | 第85-92页 |
| 附录 | 第92-94页 |
| 攻读博士期间取得的学术成就 | 第94页 |
| 承担科研项目 | 第94-95页 |
| 致谢 | 第95-96页 |
| 个人简介 | 第96页 |
