| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩写词 | 第14-15页 |
| 第一章: 绪论 | 第15-25页 |
| 1. 研究背景 | 第15-16页 |
| 2. 国内外研究进展 | 第16-23页 |
| 2.1 反刍动物瘤胃中的尿素分解菌 | 第16-17页 |
| 2.2 细菌脲酶的分子结构与活化 | 第17-19页 |
| 2.3 细菌脲酶活性的调控 | 第19-20页 |
| 2.4 瘤胃内的脲酶分布及其活性 | 第20-21页 |
| 2.5 常见脲酶抑制剂的种类及其抑制原理 | 第21-22页 |
| 2.6 脲酶抑制剂对畜牧业生产的影响 | 第22-23页 |
| 3. 研究目标和内容 | 第23-24页 |
| 3.1 研究目标 | 第23-24页 |
| 3.2 研究内容 | 第24页 |
| 4. 技术路线 | 第24-25页 |
| 第二章: 乙酰氧肟酸的合成优化 | 第25-40页 |
| 1. 前沿 | 第25-26页 |
| 2. 材料与方法 | 第26-32页 |
| 2.1 化学合成的原理 | 第26页 |
| 2.2 合成原料和仪器设备 | 第26-27页 |
| 2.3 化学合成的优化 | 第27-32页 |
| 3. 结果与分析 | 第32-38页 |
| 3.1 溶剂的确定 | 第32-33页 |
| 3.2 萃取剂的确定 | 第33-34页 |
| 3.3 碱性溶质的确定 | 第34页 |
| 3.4 反应温度的确定 | 第34-35页 |
| 3.5 乙酸乙酯用量的确定 | 第35-36页 |
| 3.6 最终反应条件的验证 | 第36-38页 |
| 3.7 IC50值的确定 | 第38页 |
| 4. 结论 | 第38-40页 |
| 第三章: 乙酰氧肟酸对奶牛瘤胃尿素氮代谢的影响 | 第40-53页 |
| 1. 前沿 | 第40页 |
| 2. 材料与方法 | 第40-44页 |
| 2.1 实验设计 | 第40-41页 |
| 2.2 实验日粮与饲养管理 | 第41-42页 |
| 2.3 样品采集 | 第42-43页 |
| 2.4 样品分析 | 第43页 |
| 2.5 统计分析 | 第43-44页 |
| 3. 结果与分析 | 第44-52页 |
| 3.1 乙酰氧肟酸对瘤胃尿素氮代谢的影响 | 第44-47页 |
| 3.2 乙酰氧肟酸对奶牛血液生化指标的影响 | 第47-51页 |
| 3.3 乙酰氧肟酸对产奶量和乳品质的影响 | 第51-52页 |
| 4. 结论 | 第52-53页 |
| 第四章: 乙酰氧肟酸对奶牛瘤胃微生物群落的影响 | 第53-74页 |
| 1. 前沿 | 第53-54页 |
| 2. 材料与方法 | 第54-63页 |
| 2.1 批次发酵实验设计 | 第54-55页 |
| 2.2 批次发酵 | 第55-56页 |
| 2.3 样品采集 | 第56页 |
| 2.4 样品分析 | 第56-57页 |
| 2.5 微生物DNA的提取 | 第57-58页 |
| 2.6 聚合酶链式反应-变性梯度凝胶电泳(PCR-DGGE) | 第58-59页 |
| 2.7 定量实时PCR (qPCR) | 第59-62页 |
| 2.8 统计分析 | 第62页 |
| 2.9 人工瘤胃模拟系统实验设计与样品采集 | 第62页 |
| 2.10 脲酶基因和16S RNA基因的定量 | 第62-63页 |
| 2.11 细菌16S rRNA基因扩增、测序及数据分析 | 第63页 |
| 3. 结果 | 第63-70页 |
| 3.1 尿素水解的抑制和氨氮的形成 | 第63-66页 |
| 3.2 瘤胃细菌多样性水平的变化 | 第66-67页 |
| 3.3 瘤胃纤维分解菌丰度的变化 | 第67-69页 |
| 3.4 瘤胃尿素分解菌的变化 | 第69-70页 |
| 4. 讨论 | 第70-74页 |
| 第五章: 结论 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-86页 |
| 致谢 | 第86-87页 |
| 个人简历 | 第87-89页 |