| 致谢 | 第7-8页 |
| 摘要 | 第8-9页 |
| ABSTRACT | 第9-10页 |
| 第一章 绪论 | 第16-22页 |
| 1.1 真菌多糖的提取 | 第16-17页 |
| 1.1.1 热水浸提法 | 第16页 |
| 1.1.2 碱提取法 | 第16页 |
| 1.1.3 酶消化提取法 | 第16-17页 |
| 1.1.4 微波辅助提取法 | 第17页 |
| 1.2 真菌多糖的纯化 | 第17页 |
| 1.2.1 膜分离技术 | 第17页 |
| 1.2.2 色谱技术 | 第17页 |
| 1.3 真菌多糖的结构分析 | 第17-19页 |
| 1.3.1 一级结构特征解析 | 第18页 |
| 1.3.2 高级结构特征解析 | 第18-19页 |
| 1.4 真菌多糖的化学修饰 | 第19-20页 |
| 1.4.1 羧甲基化修饰 | 第19页 |
| 1.4.2 硫酸化修饰 | 第19页 |
| 1.4.3 乙酰化修饰 | 第19-20页 |
| 1.5 真菌多糖的生物活性 | 第20页 |
| 1.5.1 抗氧化、抗疲劳、抗辐射活性 | 第20页 |
| 1.5.2 降血压、降血脂、降血糖活性 | 第20页 |
| 1.5.3 抗肿瘤、提高免疫功能活性 | 第20页 |
| 1.5.4 抗病毒活性 | 第20页 |
| 1.6 粒毛盘菌多糖的研究现状 | 第20-21页 |
| 1.6.1 粒毛盘菌多糖的结构特征 | 第20-21页 |
| 1.6.2 粒毛盘菌多糖的生物活性 | 第21页 |
| 1.7 本课题研究的内容与意义 | 第21-22页 |
| 第二章 粒毛盘菌YM240多糖及其衍生物的制备和结构表征 | 第22-36页 |
| 2.1 引言 | 第22页 |
| 2.2 材料和方法 | 第22-26页 |
| 2.2.1 材料 | 第22页 |
| 2.2.2 试剂与仪器 | 第22-24页 |
| 2.2.3 多糖的提取和纯化 | 第24页 |
| 2.2.4 LEP的结构表征 | 第24-25页 |
| 2.2.5 LEP的羧甲基化和硫酸化修饰 | 第25页 |
| 2.2.6 LEP的羧甲基化和硫酸化衍生物取代度的测定 | 第25-26页 |
| 2.2.7 CLEP和SLEP的结构表征 | 第26页 |
| 2.2.8 统计学分析 | 第26页 |
| 2.3 结果与分析 | 第26-35页 |
| 2.3.1 LEP的纯化 | 第26页 |
| 2.3.2 LEP的均一性、分子量及单糖组成 | 第26-27页 |
| 2.3.3 LEP的FT-IR光谱分析 | 第27-28页 |
| 2.3.4 LEP的甲基化分析 | 第28-29页 |
| 2.3.5 LEP的NMR光谱分析 | 第29-32页 |
| 2.3.6 CLEP和SLEP的分子量 | 第32-33页 |
| 2.3.7 CLEP和SLEP的DS和产量 | 第33-34页 |
| 2.3.8 CLEP和SLEP的FT-IR光谱分析 | 第34页 |
| 2.3.9 CLEP和SLEP的13C NMR光谱分析 | 第34-35页 |
| 2.4 本章小结 | 第35-36页 |
| 第三章 粒毛盘菌YM240多糖及其衍生物的体外抗氧化和降血糖活性 | 第36-46页 |
| 3.1 引言 | 第36页 |
| 3.2 材料与方法 | 第36-39页 |
| 3.2.1 材料 | 第36页 |
| 3.2.2 主要试剂与仪器 | 第36-37页 |
| 3.2.3 LEP、CLEP和SLEP的体外抗氧化活性 | 第37-38页 |
| 3.2.3.1 LEP、CLEP和SLEP对DPPH自由基的清除作用 | 第37-38页 |
| 3.2.3.2 LEP、CLEP和SLEP对羟基自由基的清除作用 | 第38页 |
| 3.2.3.3 LEP、CLEP和SLEP的还原力测定 | 第38页 |
| 3.2.4 LEP、CLEP和SLEP的体外降血糖活性 | 第38-39页 |
| 3.2.4.1 LEP、CLEP和SLEP对α-葡萄糖苷酶抑制作用 | 第38页 |
| 3.2.4.2 LEP、CLEP和SLEP对α-淀粉酶的抑制作用 | 第38-39页 |
| 3.2.4.3 LEP、CLEP和SLEP对葡萄糖扩散延迟指数的影响 | 第39页 |
| 3.2.5 统计学分析 | 第39页 |
| 3.3 结果与分析 | 第39-45页 |
| 3.3.1 LEP、CLEP和SLEP的体外抗氧化活性 | 第39-42页 |
| 3.3.1.1 LEP、CLEP和SLEP的DPPH自由基的清除作用 | 第39-40页 |
| 3.3.1.2 LEP、CLEP和SLEP对羟基自由基的清除作用 | 第40-41页 |
| 3.3.1.3 LEP、CLEP和SLEP还原能力测定 | 第41-42页 |
| 3.3.2 LEP、CLEP和SLEP的体外降血糖活性 | 第42-45页 |
| 3.3.2.1 LEP、CLEP和SLEP对α-葡萄糖苷酶的抑制活性 | 第42-43页 |
| 3.3.2.2 LEP、CLEP和SLEP对α-淀粉酶的抑制活性 | 第43-44页 |
| 3.3.2.3 LEP、CLEP和SLEP对葡萄糖扩散的影响 | 第44-45页 |
| 3.4 本章小结 | 第45-46页 |
| 第四章 粒毛盘菌YM240多糖及其衍生物对II型糖尿病小鼠的降血糖和降血脂活性 | 第46-59页 |
| 4.1 引言 | 第46页 |
| 4.2 材料与方法 | 第46-49页 |
| 4.2.1 材料 | 第46-47页 |
| 4.2.2 主要试剂与仪器 | 第47-48页 |
| 4.2.3 动物实验[120] | 第48页 |
| 4.2.4 口服葡萄糖耐受性试验（OGTT） | 第48页 |
| 4.2.5 空腹血糖值、体重和器官指数 | 第48页 |
| 4.2.6 血清生化分析 | 第48页 |
| 4.2.7 肝脏、骨骼肌和脂肪组织的制备和分析 | 第48-49页 |
| 4.2.8 小鼠胰腺组织病理学观察 | 第49页 |
| 4.2.9 统计学分析 | 第49页 |
| 4.3 结果与分析 | 第49-57页 |
| 4.3.1 LEP、CLEP和SLEP对FBG水平、体重和脏器指数的影响 | 第49-50页 |
| 4.3.2 LEP、CLEP和SLEP对口服葡萄糖耐量试验的影响 | 第50-51页 |
| 4.3.3 LEP、CLEP 和 SLEP 对血清 Hb A1c 和 FINS 以及肝糖原的影响 | 第51-52页 |
| 4.3.4 LEP、CLEP 和 SLEP 对血清 FFA、TG 和 TC 的影响 | 第52-53页 |
| 4.3.5 LEP、CLEP和SLEP对小鼠胰腺组织的病理学变化的影响 | 第53-54页 |
| 4.3.6 LEP、CLEP和SLEP对肝脏关键的葡萄糖代谢酶的表达的影响 | 第54-55页 |
| 4.3.7 LEP、CLEP和SLEP对骨骼肌中AMPK、GLUT4和脂肪组织中PPAR-γ的影响 | 第55-57页 |
| 4.4 本章小结 | 第57-59页 |
| 第五章 结论与展望 | 第59-60页 |
| 5.1 结论 | 第59页 |
| 5.2 创新点 | 第59页 |
| 5.3 展望 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-71页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文及申报的专利 | 第71-73页 |
