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油菜质膜水孔蛋白BnPIP1基因的功能分析及其上游调控区的研究

中文摘要第1-5页
英文摘要第5-11页
1 前言第11-40页
 1.1 研究的目的和意义第11页
 1.2 文献综述第11-39页
  1.2.1 植物水孔蛋白研究进展第11-29页
   1.2.1.1 水孔蛋白的发现第11-14页
   1.2.1.2 水孔蛋白的结构第14-15页
   1.2.1.3 植物水孔蛋白的分类第15-18页
   1.2.1.4 水孔蛋白在植物中的存在部位第18-20页
   1.2.1.5 植物水孔蛋白的活性调控第20-24页
   1.2.1.6 植物水孔蛋白的分子生物学研究第24-26页
   1.2.1.7 水孔蛋白的生理功能第26-29页
   1.2.1.8 结束语第29页
  1.2.2 基于PCR的克隆与己知序列相邻的侧翼序列的染色体步行技术第29-39页
   1.2.2.1 基于PCR的染色体步行技术第30-37页
    1.2.2.1.1 反向PCR技术第30页
    1.2.2.1.2 cDNA末端快速扩增法第30-33页
    1.2.2.1.3 Panhandle PCR第33-34页
    1.2.2.1.4 单引物介导PCR的染色体步行技术第34页
    1.2.2.1.5 利用随机引物进行的染色体步行技术第34页
    1.2.2.1.6 RAGE技术第34-36页
    1.2.2.1.7 连接介导PCR的染色体步行第36-37页
   1.2.2.2 提高染色体步行中PCR效率的策略第37-39页
    1.2.2.2.1 混合型DNA聚合酶的应用第37页
    1.2.2.2.2 热启动PCR的应用第37-38页
    1.2.2.2.3 降落PCR的应用第38页
    1.2.2.2.4 两步PCR的应用第38页
    1.2.2.2.5 抑制PCR的应用第38-39页
 1.3 本论文拟解决的问题第39-40页
2 材料与方法第40-60页
 2.1 油菜质膜水孔蛋白BnPIPl基因的克隆及其在烟草中的正义和反义表达第40-53页
  2.1.1 实验材料第40-41页
   2.1.1.1 植物材料第40页
   2.1.1.2 菌种和质粒第40页
   2.1.1.3 分子生物学及生化试剂第40页
   2.1.1.4 RT-PCR法从油菜total RNA中扩增BnPIPl基因的引物第40-41页
   2.1.1.5 培养基第41页
  2.1.2 实验方法第41-53页
   2.1.2.1 油菜质膜水孔蛋白BnPIPl基因的克隆第41-43页
    2.1.2.1.1 油菜总RNA的制备第41-42页
    2.1.2.1.2 RNA样品中DNA污染的去除第42页
    2.1.2.1.3 油菜质膜水孔蛋白BnPIPl基因的RT-PCR第42-43页
   2.1.2.2 植物双元表达载体的构建第43-46页
    2.1.2.2.1 BnPIPlPCR扩增产物的克隆第43页
    2.1.2.2.2 BnPIPl正义及反义双元表达载体的构建第43-46页
   2.1.2.3 农杆菌介导的烟草遗传转化第46-48页
    2.1.2.3.1 农杆菌LBA4404感受态的制备第46-47页
    2.1.2.3.2 农杆菌LBA4404的转化-冻融法第47页
    2.1.2.3.3 烟草叶盘法转化及再生第47-48页
   2.1.2.4 烟草再生植株的鉴定第48-51页
    2.1.2.4.1 植物基因组DNA的制备第48页
    2.1.2.4.2 TRlzol法制备烟草植株总RNA第48页
    2.1.2.4.3 转基因再生植株的PCR鉴定第48-49页
    2.1.2.4.4 转基因再生植株的Southern鉴定第49-50页
    2.1.2.4.5 转基因再生植株的RT-PCR鉴定第50-51页
   2.1.2.5 油菜BnPIPl基因的功能检测第51-53页
    2.1.2.5.1 转基因阳性株叶肉原生质体的分离与低渗处理第51-52页
    2.1.2.5.2 转基因阳性株的整株干旱性试验第52页
    2.1.2.5.3 转基因阳性株T_0代种子的萌发实验第52-53页
 2.2 油菜质膜水孔蛋白BnPIPl基因上游调控区的染色体步行及功能分析第53-60页
  2.2.1 实验材料第53-55页
   2.2.1.1 植物材料第53页
   2.2.1.2 菌种和质粒第53页
   2.2.1.3 分子生物学和生化试剂第53页
   2.2.1.4 寡聚核苷酸序列第53-55页
    2.2.1.4.1 BnPIPl上游调控区的染色体步行的接头序列第53-54页
    2.2.1.4.2 接头引物第54页
    2.2.1.4.3 BnPIPl基因特异性引物第54页
    2.2.1.4.4 测通上游调控区的内部引物第54页
    2.2.1.4.5 获得上游调控区全长片断的引物第54页
    2.2.1.4.6 上游调控区5’端不同长度缺失片断的引物第54-55页
   2.2.1.5 X-Gluc染色液的配制第55页
   2.2.1.6 烟草及细菌培养基第55页
  2.2.2 实验方法第55-60页
   2.2.2.1 BnPIPl上游调控区的克隆及测序第55-57页
    2.2.2.1.1 油菜基因组总DNA的提取第55页
    2.2.2.1.2 连接介导的染色体步行第55-57页
   2.2.2.2 BnPIPl上游调控区全长片断与gus融合表达载体的构建第57-58页
   2.2.2.3 全长启动子5’缺失载体的构建第58页
   2.2.2.4 表达载体转化根癌土壤农杆菌第58页
   2.2.2.5 烟草的叶盘法转化及再生第58页
   2.2.2.6 全长启动子指导gus基因表达的活性检测第58-59页
   2.2.2.7 5’缺失载体转化烟草愈伤组织的GUS活性检测第59-60页
3 结果与分析第60-85页
 3.1 BnPIPl基因的克隆及其在烟草中的正义和反义表达第60-74页
  3.1.1 BnPIP1基因的获得及序列分析第60-63页
  3.1.2 正义及反义双元表达载体的构建第63-64页
  3.1.3 烟草的遗传转化及再生第64-65页
  3.1.4 转基因烟草的PCR鉴定第65-66页
  3.1.5 转基因烟草的Southern检测第66-67页
  3.1.6 转基因烟草的RT-PCR检测第67页
  3.1.7 转基因烟草的形态特征第67-69页
  3.1.8 油菜质膜水孔蛋白BnPIPl基因的功能分析第69-73页
   3.1.8.1 转基因阳性株叶肉原生质体的低渗处理第69-70页
   3.1.8.2 转基因阳性株的整株干旱性试验第70-71页
   3.1.8.3 转基因阳性株T_0代种子的萌发实验第71-73页
  3.1.9 转基因阳性株后代转基因的分离比第73-74页
 3.2 油菜质膜水孔蛋白BnPIPl基因上游调控区的染色体步行第74-85页
  3.2.1 BnPIPl基因上游调控区的克隆及序列分析第74-77页
  3.2.2 BnPIPl基因上游调控区的启动子活性分析第77-80页
   3.2.2.1 gus融合表达载体的构建及对烟草的转化第77-79页
   3.2.2.2 转化烟草再生小芽的GUS活性检测第79-80页
  3.2.3 BnPIPl基因上游调控区的启动子元件的初步分析第80-85页
   3.2.3.1 BnPIPl上游调控区5’缺失载体的构建及对烟草的转化第80-81页
   3.2.3.2 5’缺失载体转化烟草愈伤组织的GUS活性检测第81-83页
   3.2.3.3 5’缺失载体转化烟草的PCR鉴定第83-85页
4 讨论第85-93页
 4.1 水孔蛋白与植物抗旱性的关系第85-86页
 4.2 试验设计与鉴定方法的选择第86-88页
 4.3 BnPIPl基因在转基因烟草中的表达状况第88-89页
 4.4 转基因烟草的表性特征第89-90页
 4.5 连接介导PCR的染色体步行技术第90页
 4.6 BnPIPl基因上游调控区的序列特征第90-91页
 4.7 BnPIPl基因上游调控区的启动子活性分析第91-93页
5 结论第93-95页
参考文献第95-112页
附录第112-128页
致谢第128-129页

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