| 中文摘要 | 第1-5页 |
| 英文摘要 | 第5-9页 |
| 目录 | 第9-13页 |
| 第一章 文献综述和本论文工作概述 | 第13-41页 |
| 前言 | 第13-14页 |
| 1．1 硒的存在形式 | 第14-16页 |
| 1．2 硒在生命活动中的意义 | 第16-18页 |
| 1．2．1 硒化物同重大疾病的关系 | 第16-17页 |
| 1．2．2 硒生物效应的活性氧自由基机理 | 第17-18页 |
| 1．3 复杂样品中总硒的测定 | 第18-28页 |
| 1．3．1 样品的消解 | 第18页 |
| 1．3．2 总硒的测定 | 第18-28页 |
| 1．3．2．1 SE（VI）的预还原 | 第20页 |
| 1．3．2．2 氢化物的发生反应（H2SE） | 第20-22页 |
| 1．3．2．3 氢化物发生的实验方法 | 第22-26页 |
| 1．3．2．4 氢化物发生的模式（MODEOFHG） | 第26-27页 |
| 1．3．2．5 原子化的方法 | 第27-28页 |
| 1．4 含硒生物大分子的生物与化学形态分析 | 第28-32页 |
| 1．4．1 含硒生物大分子的提取 | 第29-30页 |
| 1．4．2 含硒生物大分子的分离 | 第30-31页 |
| 1．4．3 含硒生物大分子的鉴定 | 第31-32页 |
| 1．5 本论文的工作 | 第32-35页 |
| 参考文献 | 第35-41页 |
| 第二章 碱性熔融-碱性介质预还原-碱性模式氢化物发生-ICPAES联用技术测定总硒 | 第41-57页 |
| 2．1 前人工作评述 | 第41-45页 |
| 2．1．1 样品的消解 | 第41-43页 |
| 2．1．2 氢化物发生-原子光谱分析测定样品中总硒 | 第43-45页 |
| 2．2 实验部分 | 第45-46页 |
| 2．2．1 实验仪器装置和操作条件 | 第45-46页 |
| 2．2．2 试剂和标准溶液的配制 | 第46页 |
| 2．2．3 实验过程 | 第46页 |
| 2．3 实验的结果与讨论 | 第46-55页 |
| 2．3．1 样品的碱性熔融 | 第46-47页 |
| 2．3．2 碱性模式氢化物发生过程中实验影响因素 | 第47-50页 |
| 2．3．3 碱性介质中SE（VI）转化为SE（IV） | 第50-51页 |
| 2．3．4 过渡金属离子干扰的消除 | 第51-53页 |
| 2．3．5 新技术准确度的验证 | 第53-54页 |
| 2．3．6 实际样品的分析 | 第54-55页 |
| 2．4 小结 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-57页 |
| 第三章 步进H2SE发生（STEP-WISEHYDRIDEGENERATION）-电感耦合等离子体光谱（ICPAES）联用技术探索研究 | 第57-69页 |
| 3．1 引言 | 第57-60页 |
| 3．2 实验部分 | 第60-62页 |
| 3．3 结果与讨论 | 第62-67页 |
| 3．3．1 步进氢化物发生-ICPAES中SE（IV）氢化行为的影响因素 | 第62-67页 |
| 3．3．2 SE（VI）和有机硒化合物的步进氢化的初步实验 | 第67页 |
| 3．4 小结 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-69页 |
| 第四章 应用多种联用技术研究SE（IV）在小鼠衰老模型体内的生物代谢特点 | 第69-88页 |
| 4．1 引言 | 第69-73页 |
| 4．2 实验部分 | 第73-78页 |
| 4．2．1 实验动物模型的培养 | 第73页 |
| 4．2．2 实验仪器装置及试剂 | 第73-75页 |
| 4．2．3 实验过程 | 第75-78页 |
| 4．3 结果与讨论 | 第78-86页 |
| 4．3．1 各种生化指标的测定结果与讨论 | 第78-79页 |
| 4．3．2 微波消解-微波预还原-连续氢化物发生-ICPAES联用技术测定A?B?C?D四组小鼠模型体内主要生命器官中的总硒 | 第79-85页 |
| 4．3．3 双向凝胶电泳分离结果 | 第85-86页 |
| 4．4 小结 | 第86-87页 |
| 参考文献 | 第87-88页 |
| 第五章 应用多种分析鉴定技术研究硒在生物体内的代谢吸收 | 第88-108页 |
| 5．1 引言 | 第88-89页 |
| 5．2 鉴定SDS-PAGE胶条中硒蛋白存在及用于研究不同生化形态的硒化物在生物体内的代谢转化规律 | 第89-97页 |
| 5．2．1 微型石墨坩埚碱性熔融-碱性模式步进氢化物发生-ICPAES联用技术鉴定SDS-PAGE胶条中硒蛋白存在 | 第89-91页 |
| 5．2．2 结果与讨论 | 第91-97页 |
| 5．2．2．1 微型石墨坩埚碱性熔融消解蛋白胶条 | 第92页 |
| 5．2．2．2 碱性介质中SE（VI）转化为SE（IV）的预还原 | 第92-93页 |
| 5．2．2．3 碱性模式步进氢化物发生-ICPAES联用技术鉴定硒蛋白的存在 | 第93-97页 |
| 5．3 微波消解-氢化物发生-ICPAES联用技术用于分析硒在生物体内的吸收与分布 | 第97-105页 |
| 5．3．1 实验部分 | 第97-98页 |
| 5．3．2 结果与讨论 | 第98-105页 |
| 5．3．2．1 家禽体内不同生物组织的样品的消解条件 | 第98-99页 |
| 5．3．2．2 不同生物化学形态的硒化物在不同动物体内主要生命器官的代谢吸收特点 | 第99-102页 |
| 5．3．2．3 初步研究生物体内硒化物对汞的拮抗作用 | 第102-104页 |
| 5．3．2．4 初步研究肝癌细胞对亚硒酸钠水溶液的富集吸收规律 | 第104-105页 |
| 附录 | 第105-107页 |
| 参考文献 | 第107-108页 |
| 第六章 硒酵母中生物有效成分的提取 | 第108-118页 |
| 6．1 引言 | 第108-109页 |
| 6．2 实验部分 | 第109-112页 |
| 6．2．1 实验试剂 | 第109页 |
| 6．2．2 实验装置与设备 | 第109-110页 |
| 6．2．3 实验过程 | 第110-112页 |
| 6．3 结果与讨论 | 第112-116页 |
| 6．3．1 硒酵母中有机与无机的鉴定 | 第112-114页 |
| 6．3．2 酵母细胞壁破碎方法的比较 | 第114-116页 |
| 6．4 小结 | 第116-117页 |
| 参考文献 | 第117-118页 |
| 第七章 新型纳米沸石组装体材料亲和分离硒蛋白-P的研究 | 第118-136页 |
| 7．1 引言 | 第118-120页 |
| 7．2 实验部分 | 第120-123页 |
| 7．2．1 实验装置和仪器 | 第120页 |
| 7．2．2 实验试剂 | 第120-121页 |
| 7．2．3 实验过程 | 第121-123页 |
| 7．3 结果与讨论 | 第123-133页 |
| 7．3．1 纳米沸石组装体为亲和色谱填料的特点 | 第123-124页 |
| 7．3．2 含不同组氨酸结构的多肽混合物的分离 | 第124-126页 |
| 7．3．3 小鼠血浆中硒蛋白-P的分离 | 第126-129页 |
| 7．3．4 沸石修饰粉煤灰组装体亲和分离分离蛋白质混合物 | 第129-131页 |
| 7．3．5 杂原子沸石FEZSM-5分离蛋白质混合物 | 第131-133页 |
| 7．4 小结 | 第133-136页 |
| 参考文献 | 第136-138页 |
| 发表论文 | 第138-139页 |
| 致谢 | 第139-140页 |
