首页--生物科学论文--生物工程学(生物技术)论文--酶工程论文--固定化酶和固定化细胞技术论文

脂肪酶的固定化及其催化性能的研究

提要第1-12页
第一章 前言第12-44页
   ·酶与手性第12-15页
     ·手性的研究意义及重要性第12-13页
     ·手性化合物的制备第13-14页
     ·酶在手性技术上的应用第14-15页
   ·脂肪酶第15-21页
     ·脂肪酶的概述第15-16页
     ·脂肪酶的活性部位结构及其催化机理第16-17页
     ·脂肪酶催化拆分第17-20页
     ·脂肪酶在应用中存在的问题第20-21页
   ·固定化酶第21-35页
     ·固定化酶的概述第21-22页
     ·酶的固定化方法第22-30页
       ·吸附法第22-24页
       ·包埋法第24-26页
       ·共价法第26-28页
       ·交联法第28-30页
     ·固定化酶的制备原则第30-31页
     ·固定化酶的性质第31-34页
     ·酶固定化过程中存在的问题第34-35页
   ·本文的研究思想与主要内容第35-37页
   ·参考文献第37-44页
第二章 介孔分子筛固定化脂肪酶的研究第44-69页
   ·引言第44-45页
   ·材料与方法第45-48页
     ·主要仪器第45页
     ·主要试剂第45-46页
     ·脂肪酶溶液的制备第46页
     ·脂肪酶的固定化第46页
     ·脂肪酶的活力测定第46-47页
     ·蛋白含量的测定第47页
     ·固定化脂肪酶的活力回收和固定化率第47页
     ·分子筛SBA-15 的合成与表征第47-48页
     ·分子筛SBA-15 的表面修饰第48页
   ·结果与讨论第48-65页
     ·固定化载体的选择第48-50页
     ·SBA-15 的合成与表征结果第50-52页
     ·对SBA-15 载体的改性研究第52-57页
       ·SBA-15 载体的表面修饰第52-54页
       ·含不同模板量的SBA-15 的制备第54-57页
     ·固定化条件对SBA-15(48)固定化酶的影响第57-60页
       ·酶浓度对脂肪酶固定化的影响第57页
       ·环境pH 对脂肪酶固定化的影响第57-58页
       ·缓冲液离子强度对脂肪酶固定化的影响第58-59页
       ·固定化时间对脂肪酶固定化的影响第59-60页
     ·固定化酶的表征第60页
     ·固定化酶的紫外光谱第60-61页
     ·固定化过程分析第61-65页
   ·结论第65-66页
   ·参考文献第66-69页
第三章 大孔树脂对脂肪酶的固定化研究第69-97页
   ·引言第69-70页
   ·材料和方法第70-74页
     ·实验材料第70-71页
     ·HP20 固定化脂肪酶第71页
     ·EC-EP固定化脂肪酶第71-72页
     ·EC-EP载体活化度的测定第72-73页
     ·蛋白含量的测定第73页
     ·吸附曲线的绘制第73页
     ·固定化脂肪酶的活力测定第73页
     ·固定化脂肪酶的固定化效率和活力回收第73-74页
   ·结果与讨论第74-93页
     ·载体的筛选第74-75页
     ·HP20-PSL固定化条件的优化第75-79页
     ·HP20-PSL的吸附平衡等温线第79-80页
     ·HP20-PSL吸附过程的动力学研究第80-85页
     ·HP20-PSL的固定化历程第85-86页
     ·EC-EP对脂肪酶的固定化第86-87页
     ·EC-EP载体活化度的优化第87-89页
     ·EC-EP-NH_2-PSL固定化条件的优化第89-90页
     ·EC-EP-NH_2 固定化脂肪酶的机理研究第90-93页
   ·结论第93页
   ·参考文献第93-97页
第四章 交联脂肪酶聚集体的制备第97-113页
   ·引言第97-98页
   ·材料与方法第98-99页
     ·实验材料第98页
     ·脂肪酶的固定化第98-99页
     ·CLEAs红外光谱的测定第99页
     ·固定化脂肪酶的活力测定第99页
     ·蛋白含量的测定第99页
     ·固定化脂肪酶的固定化效率和活力回收第99页
   ·结果与讨论第99-110页
     ·沉淀剂的选择第99-101页
     ·CLEAs制备条件的优化第101-106页
       ·酶浓度对CLEAs的影响第102页
       ·沉淀剂用量对CLEAs的影响第102-104页
       ·交联剂的加入量对CLEAs的影响第104-105页
       ·交联时间对CLEAs的影响第105-106页
     ·表面活性剂对CLEAs的影响第106-107页
     ·CLEAs的红外光谱第107-108页
     ·戊二醛在CLEAs制备过程中的反应机理第108-110页
   ·结论第110页
   ·参考文献第110-113页
第五章 固定化酶酶学性质的研究第113-127页
   ·引言第113页
   ·材料和方法第113-115页
     ·实验材料第113-114页
     ·温度对固定酶的影响第114页
     ·pH对固定化酶的影响第114页
     ·金属离子对固定化酶的影响第114页
     ·固定化酶的相对活力第114页
     ·固定化酶的剩余活力第114-115页
   ·结果与讨论第115-124页
     ·温度对固定化酶活性和稳定性的影响第115-116页
     ·pH对固定化酶活性和稳定性的影响第116-118页
     ·金属离子对固定化酶活性的影响第118-119页
     ·固定化酶在水相和有机相中的稳定性第119-123页
     ·固定化酶的储藏稳定性第123-124页
   ·结论第124-125页
   ·参考文献第125-127页
第六章 固定化脂肪酶催化拆分2-[(2-甲基-6-乙基)苯基氨基]丙酸的研究第127-152页
   ·引言第127-128页
   ·材料和方法第128-131页
     ·仪器和药品第128-129页
     ·背景电解质溶液和样品溶液的配制第129页
     ·实验方法第129页
     ·NEMPA 转化率(C)的检测第129-130页
     ·NEMPA 对映体过量值(e.e.p)的检测第130-131页
     ·立体选择性比率(E)的计算第131页
   ·结果与讨论第131-147页
     ·固定化酶的筛选第131-132页
     ·Ac-CLEA和EC-EP固定化酶催化拆分NEMPA第132-140页
       ·温度对催化拆分的影响第132-133页
       ·pH对催化拆分的影响第133-135页
       ·固定化酶加入量对催化拆分的影响第135-136页
       ·催化拆分NEMPA的反应进程第136-137页
       ·催化拆分NEMPA的动力学分析第137-140页
     ·固定化酶的重复使用第140-141页
     ·有机溶剂对固定化脂肪酶活性和立体选择性的影响第141-144页
     ·表面活性剂对固定化脂肪酶活性和立体选择性的影响第144-147页
   ·结论第147-148页
   ·参考文献第148-152页
第七章 固定化脂肪酶催化拆分手性2-辛醇的研究第152-178页
   ·引言第152-153页
   ·材料和方法第153-156页
     ·主要试剂和仪器第153页
     ·酶催化(R,S)-2-辛醇的酯交换反应第153页
     ·底物转化率的测定第153-154页
     ·2-辛醇的光学纯度(e.e.)的测定第154-155页
     ·立体选择性比率(E)的测定第155页
     ·产物的分离第155-156页
   ·结果与讨论第156-172页
     ·固定化酶的筛选第156-157页
     ·固定化酶拆分2-辛醇反应条件的确定第157-163页
     ·提高固定化酶拆分2-辛醇的催化活性和立体选择性第163-169页
       ·固定化酶的水含量第163-165页
       ·有机溶剂第165-169页
     ·固定化酶拆分2-辛醇的反应进程第169-171页
     ·固定化酶的重复使用第171-172页
   ·结论第172-173页
   ·参考文献第173-178页
攻读博士期间的主要成果第178-180页
摘要第180-185页
Abstract第185-191页
致谢第191页

论文共191页,点击 下载论文
上一篇:基于人工生命的电子细胞模型研究
下一篇:构建具有谷胱甘肽过氧化物酶活力的人工酶