摘要 | 第1-9页 |
Abstract | 第9-12页 |
第一章 文献综述 | 第12-46页 |
·贝类功能基因研究进展 | 第12-20页 |
·贝类基因组及功能基因的研究现状 | 第12-13页 |
·贝类功能基因研究的主要内容和方法 | 第13-20页 |
·氧自由基和抗氧化系统 | 第20-30页 |
·氧自由基的分类和危害 | 第21-24页 |
·抗氧化系统 | 第24-28页 |
·贝类氧自由基的产生与危害 | 第28-30页 |
·超氧化物歧化酶的研究进展及应用 | 第30-41页 |
·超氧化物歧化酶的分类和分布 | 第30-32页 |
·超氧化物歧化酶的分子结构特征 | 第32-35页 |
·超氧化物歧化酶的生物学功能和应用 | 第35-36页 |
·超氧化物歧化酶在水生生物中的研究进展 | 第36-41页 |
·基因的单核昔酸多态性及其应用 | 第41-44页 |
·基因的SNP在医学上的应用 | 第41-42页 |
·基因SNP在动物遗传育种中的应用 | 第42-44页 |
·本研究的目的和意义 | 第44-46页 |
·本研究的目的 | 第44页 |
·本研究的意义 | 第44-46页 |
第二章 海湾扇贝三种超氧化物歧化酶cDNA的克隆和分析 | 第46-71页 |
·材料与方法 | 第47-57页 |
·实验材料 | 第47-49页 |
·实验方法 | 第49-57页 |
·结果 | 第57-67页 |
·AiCuZnSOD的cDNA序列分析和推导的氨基酸序列 | 第57-58页 |
·AiMnSOD的cDNA序列分析和推导的氨基酸序列 | 第58-60页 |
·AiECSOD的cDNA序列分析和推导的氨基酸序列 | 第60-62页 |
·海湾扇贝三种SOD序列的比较分析 | 第62-63页 |
·海湾扇贝三种SOD与其他物种SOD的系统进化树分析 | 第63-64页 |
·海湾扇贝三种SOD蛋白质的三维结构预测 | 第64-67页 |
·讨论 | 第67-71页 |
第三章 海湾扇贝三种超氧化物歧化酶荧光定量PCR分析 | 第71-84页 |
·材料与方法 | 第72-76页 |
·实验材料 | 第72-73页 |
·实验方法 | 第73-76页 |
·结果 | 第76-80页 |
·海湾扇贝三种SOD基因在各组织中的表达情况 | 第76-77页 |
·海湾扇贝三种SOD基因在扇贝受到鳗弧菌刺激后的表达规律 | 第77-80页 |
·讨论 | 第80-84页 |
第四章 海湾扇贝三种SOD基因组结构研究和启动子分析 | 第84-109页 |
·材料与方法 | 第85-92页 |
·实验材料 | 第85页 |
·实验方法 | 第85-92页 |
·结果 | 第92-105页 |
·海湾扇贝三种SOD基因组序列(gDNA)分析 | 第92-100页 |
·海湾扇贝三种SOD基因启动子分析 | 第100-105页 |
·讨论 | 第105-109页 |
第五章 海湾扇贝三种SOD基因的重组表达和活性测定 | 第109-123页 |
·材料和方法 | 第110-119页 |
·实验材料 | 第110-112页 |
·实验方法 | 第112-119页 |
·结果 | 第119-122页 |
·AiCuZnSOD基因的重组表达和纯化 | 第119-120页 |
·复性AiCuZnSOD重组蛋白和天然蛋白的酶活测定 | 第120页 |
·温度和pH梯度作用下重组AiCuZnSOD酶活的变化特征 | 第120页 |
·AiECSOD基因的重组表达和纯化 | 第120-121页 |
·复性AiECSOD重组蛋白和酶活测定 | 第121-122页 |
·讨论 | 第122-123页 |
第六章 海湾扇贝三种SOD基因多态性与抗菌敏感性初步分析 | 第123-141页 |
·实验材料和方法 | 第124-128页 |
·实验材料 | 第124-125页 |
·实验方法 | 第125-128页 |
·结果 | 第128-139页 |
·抗逆群体(RS)和敏感群体(SS)的鉴别 | 第128页 |
·DNA质量 | 第128页 |
·PCR电泳检测和测序结果 | 第128-130页 |
·海湾扇贝三种SOD基因部分序列SNP的统计结果 | 第130-139页 |
·讨论 | 第139-141页 |
结论 | 第141-143页 |
参考文献 | 第143-159页 |
博士期间发表的文章 | 第159-160页 |
致谢 | 第160页 |