螺旋藻中藻蓝蛋白的提取与纯化
摘要 | 第3-4页 |
ABSTRACT | 第4-5页 |
第1章 引言 | 第9-34页 |
1.1 概述 | 第9-10页 |
1.2 藻胆蛋白 | 第10-12页 |
1.2.1 藻胆蛋白的命名 | 第10页 |
1.2.2 藻胆蛋白的结构 | 第10-11页 |
1.2.3 藻胆蛋白的保存 | 第11页 |
1.2.4 藻胆蛋白的特征 | 第11-12页 |
1.3 藻红蛋白简介 | 第12-13页 |
1.4 藻蓝蛋白简介 | 第13-14页 |
1.5 藻蓝蛋白的提取 | 第14-16页 |
1.5.1 反复冻融法 | 第15页 |
1.5.2 超声波细胞破碎法 | 第15页 |
1.5.3 组织细胞捣碎法 | 第15页 |
1.5.4 化学试剂处理浸提法 | 第15-16页 |
1.5.5 溶胀法 | 第16页 |
1.6 藻蓝蛋白的分离 | 第16-18页 |
1.6.1 盐析法 | 第16-17页 |
1.6.2 等电点沉淀法 | 第17页 |
1.6.3 超滤法 | 第17-18页 |
1.7 藻蓝蛋白的纯化 | 第18-24页 |
1.7.1 层析法 | 第18-19页 |
1.7.2 反胶团萃取法 | 第19-24页 |
1.7.3 双水相萃取法 | 第24页 |
1.8 双水相萃取技术简介 | 第24-32页 |
1.8.1 双水相体系形成机理 | 第25-27页 |
1.8.2 双水相体系的相图 | 第27-28页 |
1.8.3 双水相体系的特点 | 第28-29页 |
1.8.4 影响物质分配平衡的因素 | 第29-31页 |
1.8.5 双水相萃取技术的应用 | 第31-32页 |
1.9 本论文工作的提出及研究内容 | 第32-34页 |
第2章 螺旋藻中藻蓝蛋白的提取条件探讨 | 第34-43页 |
2.1 引言 | 第34页 |
2.2 实验仪器及药品 | 第34页 |
2.3 实验方法 | 第34-36页 |
2.3.1 藻蓝蛋白的提取 | 第34-35页 |
2.3.2 分析方法 | 第35-36页 |
2.4 结果与讨论 | 第36-42页 |
2.4.1 藻蓝蛋白的定性 | 第36-37页 |
2.4.2 藻蓝蛋白提取条件探讨 | 第37-42页 |
2.5 小结 | 第42-43页 |
第3章 藻蓝蛋白的双水相萃取条件研究 | 第43-51页 |
3.1 引言 | 第43页 |
3.2 实验仪器及药品 | 第43页 |
3.3 实验方法 | 第43-46页 |
3.3.1 藻蓝蛋白粗提液的制备 | 第43-44页 |
3.3.2 双水相萃取研究 | 第44页 |
3.3.3 分析方法 | 第44-46页 |
3.4 结果与讨论 | 第46-49页 |
3.4.1 PEG的选择 | 第46-47页 |
3.4.2 TLL的确定 | 第47-48页 |
3.4.3 相比的确定 | 第48-49页 |
3.4.4 pH的确定 | 第49页 |
3.5 小结 | 第49-51页 |
第4章 藻蓝蛋白的壳聚糖、硫酸铵纯化方法研究 | 第51-59页 |
4.1 引言 | 第51页 |
4.2 实验仪器及药品 | 第51页 |
4.3 实验方法 | 第51-53页 |
4.3.1 藻蓝蛋白的粗提取 | 第51-52页 |
4.3.2 壳聚糖浓度的确定 | 第52页 |
4.3.3 硫酸铵盐析 | 第52页 |
4.3.4 分析方法 | 第52-53页 |
4.4 结果与讨论 | 第53-57页 |
4.4.1 壳聚糖浓度的确定 | 第53-54页 |
4.4.2 硫酸铵盐析 | 第54-57页 |
4.5 小结 | 第57-59页 |
第5章 藻蓝蛋白的纯化研究 | 第59-67页 |
5.1 引言 | 第59页 |
5.2 实验仪器及药品 | 第59页 |
5.3 实验方法 | 第59-61页 |
5.3.1 羟基磷灰石的制备 | 第59-60页 |
5.3.2 藻蓝蛋白的柱层析纯化 | 第60页 |
5.3.3 藻蓝蛋白的双水相纯化 | 第60页 |
5.3.4 分析方法 | 第60-61页 |
5.4 结果与讨论 | 第61-65页 |
5.4.1 过柱分离效果讨论 | 第61-64页 |
5.4.2 双水相萃取效果讨论 | 第64-65页 |
5.4.3 两纯化方法对比 | 第65页 |
5.5 小结 | 第65-67页 |
第6章 结论与展望 | 第67-70页 |
6.1 结论 | 第67-68页 |
6.2 下一步工作 | 第68-70页 |
致谢 | 第70-71页 |
参考文献 | 第71-76页 |