| 摘要 | 第7-10页 |
| Abstract | 第10-13页 |
| 缩略词表 | 第14-16页 |
| 第一章 前言 | 第16-42页 |
| 1.1 课题的提出 | 第16-17页 |
| 1.2 蜡质研究进展 | 第17-28页 |
| 1.2.1 蜡质的组成和生物功能 | 第17-18页 |
| 1.2.2 蜡质的合成和转运 | 第18-22页 |
| 1.2.3 环境对蜡质合成的影响 | 第22页 |
| 1.2.4 调控蜡质合成基因的研究 | 第22-23页 |
| 1.2.5 拟南芥蜡质相关基因的研究 | 第23-25页 |
| 1.2.6 芸薹属作物无蜡质性状的研究进展 | 第25-28页 |
| 1.3 花青素研究进展 | 第28-36页 |
| 1.3.1 花青素的组成和生物功能 | 第28-29页 |
| 1.3.2 花青素合成代谢研究 | 第29-30页 |
| 1.3.3 花青素合成代谢途径中的基因 | 第30-32页 |
| 1.3.4 影响花青素积累的因素 | 第32-33页 |
| 1.3.5 芸薹属作物中花青素的研究进展 | 第33-36页 |
| 1.4 植物中数量性状研究方法 | 第36-39页 |
| 1.4.1 数量性状的特点 | 第36页 |
| 1.4.2 连锁分析 | 第36-37页 |
| 1.4.3 关联分析 | 第37-39页 |
| 1.5 同源克隆法 | 第39-40页 |
| 1.6 图位克隆法 | 第40-41页 |
| 1.7 本研究的目的与意义 | 第41-42页 |
| 第二章 普通白菜蜡质基因的克隆和表达分析 | 第42-59页 |
| 2.1 材料和方法 | 第42-47页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第42-43页 |
| 2.1.2 两个亲本表型观察 | 第43页 |
| 2.1.3 扫描电镜和透射电镜分析 | 第43页 |
| 2.1.4 叶片表面蜡质组分的测定和分析 | 第43-44页 |
| 2.1.5 离体失水率和叶绿素浸出率分析 | 第44-45页 |
| 2.1.6 BrCER1基因克隆和群体验证 | 第45-46页 |
| 2.1.7 BrCER1基因在亲本中的表达量和转录本分析 | 第46页 |
| 2.1.8 BrCER1基因与普通白菜中蜡质性状的关系 | 第46-47页 |
| 2.1.9 BrCER1基因的生物信息学分析 | 第47页 |
| 2.1.10 BrCER1基因在逆境下表达量分析 | 第47页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第47-56页 |
| 2.2.1 蜡质突变体遗传分析 | 第47-48页 |
| 2.2.2 两个亲本表型观察 | 第48页 |
| 2.2.3 无蜡质突变体表面蜡质的细胞学特征 | 第48-49页 |
| 2.2.4 无蜡质突变体蜡质成分的测定 | 第49-50页 |
| 2.2.5 无蜡质突变体的生理特征 | 第50-51页 |
| 2.2.6 同源克隆法克隆BrCER1基因和群体验证 | 第51-52页 |
| 2.2.7 BrCER1基因在亲本中的表达量和转录本分析 | 第52-53页 |
| 2.2.8 BrCER1基因与普通白菜中蜡质性状的关系 | 第53-54页 |
| 2.2.9 BrCER1基因的进化分析 | 第54-55页 |
| 2.2.10 BrCER1基因在逆境下表达量的变化分析 | 第55-56页 |
| 2.3 讨论 | 第56-59页 |
| 第三章 红菜薹蜡质基因的精细定位和功能分析 | 第59-74页 |
| 3.1 材料和方法 | 第59-63页 |
| 3.1.1 实验材料和种植 | 第59-60页 |
| 3.1.2 突变体表型观察 | 第60页 |
| 3.1.3 扫描电镜和透射电镜分析 | 第60页 |
| 3.1.4 茎表面蜡质组分的测定和分析 | 第60页 |
| 3.1.5 叶片离体失水率和叶片叶绿素浸出率分析 | 第60页 |
| 3.1.6 BrCER4基因的精细定位和克隆 | 第60-62页 |
| 3.1.7 BrCER4基因在亲本中的表达量和转录本分析 | 第62页 |
| 3.1.8 BrCER4基因与红菜薹中蜡质性状的关系 | 第62页 |
| 3.1.9 BrCER4基因的生物信息学分析 | 第62页 |
| 3.1.10 BrCER4基因在逆境下表达量分析 | 第62-63页 |
| 3.2 结果与分析 | 第63-71页 |
| 3.2.1 突变体的表型特征 | 第63-64页 |
| 3.2.2 突变体表面蜡质的细胞学特征 | 第64-65页 |
| 3.2.3 突变体蜡质成分的测定 | 第65页 |
| 3.2.4 突变体的渗透性变化 | 第65-66页 |
| 3.2.5 BrCER4基因的精细定位和克隆 | 第66-67页 |
| 3.2.6 BrCER4基因在亲本中的表达量和转录本分析 | 第67-68页 |
| 3.2.7 BrCER4基因与红菜薹中蜡质性状的关系 | 第68-69页 |
| 3.2.8 BrCER4基因的进化分析 | 第69-70页 |
| 3.2.9 BrCER4基因在逆境下表达量的变化分析 | 第70-71页 |
| 3.3 讨论 | 第71-74页 |
| 第四章 红菜薹红色基因pur07的精细定位和候选基因分析 | 第74-82页 |
| 4.1 材料和方法 | 第74-76页 |
| 4.1.1 实验材料和种植 | 第74页 |
| 4.1.2 突变体pur07表型观察 | 第74页 |
| 4.1.3 花青素含量的测定 | 第74-75页 |
| 4.1.4 pur07基因的精细定位和克隆 | 第75页 |
| 4.1.5 pur07基因的表达量分析 | 第75-76页 |
| 4.1.6 pur07基因超表达载体的构建 | 第76页 |
| 4.2 结果 | 第76-80页 |
| 4.2.1 单基因分离群体中pur07表型特征 | 第76-77页 |
| 4.2.2 花青素含量分析 | 第77页 |
| 4.2.3 多态性标记开发和pur07基因的精细定位 | 第77-79页 |
| 4.2.4 pur07基因序列的表达量分析 | 第79页 |
| 4.2.5 pur07基因超表达载体的构建 | 第79-80页 |
| 4.3 讨论 | 第80-82页 |
| 参考文献 | 第82-104页 |
| 附录一：植物总RNA提取及反转录程序 | 第104-105页 |
| 附录二：第二章节中所用的分子标记引物 | 第105-106页 |
| 附录三：第三章节中所用的分子标记引物 | 第106-107页 |
| 附录四：第四章节中所用的分子标记引物 | 第107-108页 |
| 附录五：登录基因信息 | 第108-112页 |
| 附录六：BrCER1基因在13S106和13S126中的cDNA序列和氨基酸信息 | 第112-117页 |
| 附录七：BrCER4基因在WT和glossy中的cDNA序列和氨基酸信息 | 第117-126页 |
| 附录八：红色植株中启动子区域5,409bp插入序列信息 | 第126-129页 |
| 附录九：pur07基因在红色、绿色植株中的DNA序列和氨基酸信息 | 第129-131页 |
| 附录十：在读期间已发表论文 | 第131-132页 |
| 致谢 | 第132-133页 |
