| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-22页 |
| 1 维生素E的分类、代谢途径及其调控 | 第13-16页 |
| 1.1 维生素E的结构类型和分布 | 第13-14页 |
| 1.2 维生素E的生物合成与调控 | 第14-16页 |
| 2 维生素E的生理功能 | 第16-17页 |
| 3 维生素E合成相关基因的研究进展 | 第17-20页 |
| 4 花生维生素E改良研究进展 | 第20-21页 |
| 5 本研究的目的意义 | 第21-22页 |
| 第二章 α-生育酚的需光性及在花生胚发育中的变化研究 | 第22-32页 |
| 1 引言 | 第22-23页 |
| 2 材料与方法 | 第23-25页 |
| 2.1 实验材料 | 第23页 |
| 2.2 仪器与试剂 | 第23页 |
| 2.3 高效液相色谱(HPLC)条件 | 第23页 |
| 2.4 标准曲线的绘制 | 第23-24页 |
| 2.5 翠碧一号发状根与正常根中α-生育酚的检测 | 第24-25页 |
| 2.6 花生胚发育各个时期中α-生育酚的检测 | 第25页 |
| 2.7 试样分析 | 第25页 |
| 3 实验结果与分析 | 第25-30页 |
| 3.1 标准曲线回归方程的建立 | 第25-28页 |
| 3.2 精密度实验 | 第28页 |
| 3.3 稳定性实验 | 第28页 |
| 3.4 重现性实验 | 第28-29页 |
| 3.5 翠碧一号烟草发状根与正常根中α-生育酚的检测结果 | 第29页 |
| 3.6 花生胚发育各个时期α-生育酚含量的测定分析 | 第29-30页 |
| 4 讨论 | 第30-32页 |
| 第三章 花生维生素E合成相关基因(GGDS, GGDR,ADH)的克隆与表达分析 | 第32-53页 |
| 1 引言 | 第32-33页 |
| 2 材料与方法 | 第33-37页 |
| 2.1 试验材料与试剂 | 第33页 |
| 2.2 引物设计与合成 | 第33-34页 |
| 2.3 花生RNA的提取 | 第34-35页 |
| 2.4 RACE技术克隆AhGGDS、AhGGDR和AhADH基因全长cDNA序列 | 第35-36页 |
| 2.5 AhGGDS、AhGGDR和AHADH序列生物信息学分析 | 第36页 |
| 2.6 实时荧光定量PCR与基因表达谱芯片分析 | 第36-37页 |
| 3 实验结果与分析 | 第37-50页 |
| 3.1 全长序列的获得 | 第37-40页 |
| 3.2 序列的生物信息学分析 | 第40-50页 |
| 4 讨论 | 第50-53页 |
| 第四章 花生维生素E合成关键基因HPPD的克隆及功能鉴定 | 第53-68页 |
| 1 引言 | 第53-54页 |
| 2 材料与方法 | 第54-59页 |
| 2.1 试验材料与试剂 | 第54-55页 |
| 2.2 引物设计与合成 | 第55页 |
| 2.3 花生RNA的提取 | 第55页 |
| 2.4 RACE技术克隆AhHPPD基因全长cDNA序列 | 第55-56页 |
| 2.5 HPPD基因的gDNA序列获得 | 第56页 |
| 2.6 AhHPPD序列生物信息学分析 | 第56页 |
| 2.7 实时荧光定量PCR与基因表达谱芯片分析 | 第56-57页 |
| 2.8 AhHPPD过量表达载体的构建和遗传转化烟草 | 第57-58页 |
| 2.9 转基因烟草维生素E提取与高效液相色谱检测 | 第58-59页 |
| 3 实验结果与分析 | 第59-66页 |
| 3.1 全长序列的获得 | 第59-60页 |
| 3.2 序列的生物信息学分析和系统进化分析 | 第60-63页 |
| 3.3 表达模式分析 | 第63-66页 |
| 4 讨论 | 第66-68页 |
| 第五章 结论与展望 | 第68-70页 |
| 1 结论 | 第68-70页 |
| 2 展望 | 第70页 |
| 参考文献 | 第70-80页 |
| 致谢 | 第80页 |
