摘要 | 第4-9页 |
Abstract | 第9-13页 |
英文缩略语 | 第14-19页 |
第一部分 壬基酚孕哺期暴露激活子代海马中以小胶质细胞为核心的类炎性反应的机制研究 | 第19-56页 |
1 前言 | 第19-21页 |
2 材料和方法 | 第21-28页 |
2.1 主要仪器和试剂 | 第21-25页 |
2.1.1 主要试剂 | 第21-22页 |
2.1.2 主要仪器 | 第22-23页 |
2.1.3 主要试剂的配制 | 第23-25页 |
2.2 孕期及哺乳期NP仔鼠暴露模型的建立 | 第25页 |
2.3 酶联免疫吸附实验(ELISA)检测仔鼠海马中促炎症因子含量 | 第25-26页 |
2.4 免疫荧光实验观察MG及Akt的激活 | 第26-27页 |
2.5 免疫印迹试验(Westernblot)分析Akt/MAPK/AP-1信号通路的变化 | 第27页 |
2.6 统计学分析 | 第27-28页 |
3 结果 | 第28-53页 |
3.1 孕期及哺乳期NP暴露对母鼠孕哺期体重,存活率及怀孕天数的影响 | 第28-30页 |
3.2 孕期及哺乳期NP暴露对仔鼠体重及主要脏器的影响 | 第30-35页 |
3.3 孕期及哺乳期NP暴露导致仔鼠海马促炎症因子分泌升高 | 第35-36页 |
3.4 孕期及哺乳期NP暴露导致仔鼠海马区MG数量上升 | 第36-39页 |
3.5 孕期及哺乳期NP暴露对仔鼠海马区Akt的激活 | 第39-40页 |
3.6 孕期及哺乳期NP暴露对仔鼠海马区p38的激活 | 第40-42页 |
3.7 孕期及哺乳期NP暴露对仔鼠海马区JNK的激活 | 第42-44页 |
3.8 孕期及哺乳期NP暴露对仔鼠海马区ERK的影响 | 第44-46页 |
3.9 孕期及哺乳期NP暴露对仔鼠海马区c-Jun水平的影响 | 第46-48页 |
3.10 孕期及哺乳期NP暴露对仔鼠海马区c-Fos水平的影响 | 第48-50页 |
3.11 孕期及哺乳期NP暴露对仔鼠海马区c-Jun的激活 | 第50-53页 |
4 讨论 | 第53-56页 |
第二部分 壬基酚暴露激活BV2小胶质细胞系类炎性反应的机制研究 | 第56-80页 |
5 前言 | 第56-58页 |
6 材料和方法 | 第58-65页 |
6.1 主要仪器和试剂 | 第58-61页 |
6.1.1 主要试剂 | 第58-59页 |
6.1.2 主要仪器 | 第59-60页 |
6.1.3 主要试剂的配置 | 第60-61页 |
6.2 细胞培养建模 | 第61-62页 |
6.2.1 BV2细胞系的培养 | 第61-62页 |
6.2.2 BV2细胞系NP暴露模型的建立 | 第62页 |
6.2.3 BV2细胞系ER拮抗模型的建立 | 第62页 |
6.3 MTS法检测BV2细胞系活力 | 第62页 |
6.4 ELISA检测BV2培养基上清促炎症因子分泌情况 | 第62-63页 |
6.5 BV2细胞的免疫荧光检测 | 第63页 |
6.6 Westernblot检测ER及MAPK信号通路变化 | 第63-64页 |
6.7 凝胶迁移实验(EMSA)检测BV2细胞系中AP-1的DNA结合活性 | 第64页 |
6.8 统计学分析 | 第64-65页 |
7 结果 | 第65-78页 |
7.1 NP对BV2小胶质细胞活力的影响 | 第65页 |
7.2 NP对BV2小胶质细胞炎症激活的影响 | 第65-66页 |
7.3 NP对BV2小胶质细胞分泌促炎症因子的影响 | 第66-68页 |
7.4 NP对BV2小胶质细胞Akt的激活 | 第68-70页 |
7.5 NP对BV2小胶质细胞MAPK信号通路的影响 | 第70-71页 |
7.6 NP暴露后BV2小胶质细胞Akt/MAPK信号通路的时相特征 | 第71-73页 |
7.7 NP对BV2小胶质细胞AP-1蛋白DNA结合活力的影响 | 第73-74页 |
7.8 ER亚型在BV2小胶质细胞中表达的检测 | 第74页 |
7.9 NP暴露对BV2细胞中ERβ水平的影响 | 第74-76页 |
7.10 ERβ拮抗剂对NP暴露后BV2细胞分泌IL-6水平的影响 | 第76-78页 |
8 讨论 | 第78-80页 |
结论 | 第80-81页 |
本研究创新性的自我评价 | 第81-82页 |
参考文献 | 第82-91页 |
综述 | 第91-102页 |
参考文献 | 第96-102页 |
攻读学位期间取得的研究成果 | 第102-103页 |
致谢 | 第103-104页 |
个人简历 | 第104页 |