| 摘要 | 第4-8页 |
| Abstract | 第8-12页 |
| 英文缩略语 | 第13-19页 |
| 第一部分 氯化镧对星形胶质细胞乳酸生成以及星形胶质细胞-神经元乳酸转运的影响 | 第19-58页 |
| 1 前言 | 第19-21页 |
| 2 材料与方法 | 第21-32页 |
| 2.1 主要试剂和仪器 | 第21-24页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第21-23页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第23-24页 |
| 2.1.3 其他器材 | 第24页 |
| 2.2 细胞处理与培养方法 | 第24-27页 |
| 2.2.1 实验准备 | 第24-25页 |
| 2.2.2 实验动物与取材 | 第25页 |
| 2.2.3 细胞的原代培养 | 第25-26页 |
| 2.2.4 神经元与星形胶质细胞免疫荧光鉴定 | 第26页 |
| 2.2.5 细胞的处理 | 第26-27页 |
| 2.3 测定指标及方法 | 第27-32页 |
| 2.3.1 细胞活力检测 | 第27-28页 |
| 2.3.2 糖原含量测定 | 第28页 |
| 2.3.3 乳酸含量检测 | 第28-29页 |
| 2.3.4 mRNA转录水平测定 | 第29-30页 |
| 2.3.5 蛋白表达水平测定 | 第30-31页 |
| 2.3.6 LDH活性检测 | 第31页 |
| 2.3.7 糖原磷酸化酶活性检测 | 第31-32页 |
| 2.4 统计学分析 | 第32页 |
| 3 结果 | 第32-54页 |
| 3.1 神经元与星形胶质细胞免疫荧光鉴定 | 第32-33页 |
| 3.2 镧对星形胶质细胞存活率的影响 | 第33-34页 |
| 3.3 镧及FSK/ROL对星形胶质细胞形态学改变的影响 | 第34-35页 |
| 3.4 镧及FSK/ROL对星形胶质细胞乳酸水平的影响 | 第35-36页 |
| 3.5 镧对星形胶质细胞GLUT1表达水平影响 | 第36-38页 |
| 3.6 镧对星形胶质细胞GS表达水平影响 | 第38-40页 |
| 3.7 镧对星形胶质细胞磷酸化GP表达水平影响 | 第40-42页 |
| 3.8 镧对星形胶质细胞糖原水平影响 | 第42-43页 |
| 3.9 镧对星形胶质细胞LDHA表达水平影响 | 第43-44页 |
| 3.10 镧对星形胶质细胞LDHB表达水平影响 | 第44-45页 |
| 3.11 镧对星形胶质细胞总乳酸脱氢酶活性影响 | 第45-46页 |
| 3.12 镧与FSK/ROL对星形胶质细胞GP活性的影响 | 第46-47页 |
| 3.13 镧与FSK/ROL对星形胶质细胞GS/p-GS蛋白表达比的影响 | 第47-48页 |
| 3.14 镧对星形胶质细胞MCT1表达水平影响 | 第48-50页 |
| 3.15 镧对星形胶质细胞MCT4表达水平影响 | 第50-52页 |
| 3.16 镧对共培养神经元MCT2表达水平影响 | 第52-54页 |
| 4 讨论 | 第54-56页 |
| 5 结论 | 第56-58页 |
| 第二部分 氯化镧对于星形胶质细胞兴奋性的影响 | 第58-84页 |
| 1 前言 | 第58-60页 |
| 2 材料与方法 | 第60-67页 |
| 2.1 主要试剂与仪器 | 第60-63页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第60-62页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第62-63页 |
| 2.2 细胞处理与培养方法 | 第63页 |
| 2.2.1 星形胶质细胞的培养与鉴定 | 第63页 |
| 2.2.2 细胞处理 | 第63页 |
| 2.3 测定指标及方法 | 第63-66页 |
| 2.3.1 星形胶质细胞IP3浓度检测 | 第63-64页 |
| 2.3.2 mRNA转录水平测定 | 第64-65页 |
| 2.3.3 蛋白表达水平测定 | 第65页 |
| 2.3.4 [Ca~(2+)]_i水平检测 | 第65页 |
| 2.3.5 Glu与D-serine水平测定 | 第65-66页 |
| 2.4 数据分析 | 第66-67页 |
| 3 结果 | 第67-81页 |
| 3.1 镧对星形胶质细胞PLC的表达水平影响 | 第67-69页 |
| 3.2 镧对星形胶质细胞mGluR5的表达水平影响 | 第69-71页 |
| 3.3 镧对星形胶质细胞胞内IP3水平影响 | 第71-72页 |
| 3.4 镧对星形胶质细胞内的钙离子水平影响 | 第72-73页 |
| 3.5 镧对星形胶质细胞Cx43的表达水平影响 | 第73-75页 |
| 3.6 镧对星形胶质细胞Cx30的表达水平影响 | 第75-77页 |
| 3.7 镧对星形胶质细胞胞内Glu水平影响 | 第77-78页 |
| 3.8 镧对星形胶质细胞上清中Glu水平影响 | 第78-79页 |
| 3.9 镧对星形胶质细胞胞内D-serine水平影响 | 第79-80页 |
| 3.10 镧对星形胶质细胞上清中D-serine水平影响 | 第80-81页 |
| 4 讨论 | 第81-82页 |
| 5 结论 | 第82-84页 |
| 第三部分 氯化镧诱导星形胶质细胞过度兴奋对神经元的影响 | 第84-106页 |
| 1 前言 | 第84-85页 |
| 2 材料与方法 | 第85-90页 |
| 2.1 主要试剂和仪器 | 第85-87页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第85-86页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第86-87页 |
| 2.2 细胞的处理与培养方法 | 第87页 |
| 2.2.1 神经元的培养与鉴定 | 第87页 |
| 2.2.2 神经元的处理 | 第87页 |
| 2.3 测定指标及方法 | 第87-89页 |
| 2.3.1 蛋白表达水平测定 | 第87-88页 |
| 2.3.2 mRNA转录水平测定 | 第88页 |
| 2.3.3 细胞膜损伤检测 | 第88页 |
| 2.3.4 细胞凋亡率检测 | 第88-89页 |
| 2.4 数据分析 | 第89-90页 |
| 3 结果 | 第90-104页 |
| 3.1 CM(La~(3+))对神经元NMDAR亚单位表达水平的影响 | 第90-93页 |
| 3.1.1 CM(La~(3+))对NR1表达水平的影响 | 第90-91页 |
| 3.1.2 CM(La~(3+))对NR2A表达水平的影响 | 第91-92页 |
| 3.1.3 CM(La~(3+))对NR2B表达水平的影响 | 第92-93页 |
| 3.2 CM(La~(3+))对神经元[Ca~(2+)]_i含量的影响 | 第93-94页 |
| 3.3 CM(La~(3+))作用下的神经元凋亡率 | 第94-95页 |
| 3.4 CM(La~(3+))与CM(La-free)对于神经元NMDAR亚单位表达水平的影响 | 第95-98页 |
| 3.4.1 CM(La~(3+))与CM(La-free)对NR1的mRNA与蛋白表达水平影响 | 第95-96页 |
| 3.4.2 CM(La~(3+))与CM(La-free)对NR2A的mRNA与蛋白表达水平影响 | 第96-97页 |
| 3.4.3 CM(La~(3+))与CM(La-free)对NR2B的mRNA与蛋白表达水平影响 | 第97-98页 |
| 3.5 CM(La~(3+))与CM(La-free)对于神经元[Ca~(2+)]_i含量的影响 | 第98-99页 |
| 3.6 CM(La~(3+))与CM(La-free)作用神经元的凋亡率影响 | 第99-100页 |
| 3.7 MK-801、DCKA与DAAO对CM(La-free)作用神经元[Ca~(2+)]_i含量的影响 | 第100-101页 |
| 3.8 MK-801、DCKA与DAAO对CM(La-free)作用神经元存活率影响 | 第101-102页 |
| 3.9 MK-801、DCKA与DAAO对CM(La-free)作用神经元的细胞膜损伤水平影响 | 第102-103页 |
| 3.10 MK-801、DCKA与DAAO对CM(La-free)作用神经元的凋亡率影响 | 第103-104页 |
| 4 讨论 | 第104-105页 |
| 结论 | 第105-106页 |
| 本研究创新性的自我评价 | 第106-107页 |
| 参考文献 | 第107-119页 |
| 综述 | 第119-139页 |
| 参考文献 | 第127-139页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第139-141页 |
| 致谢 | 第141-142页 |
| 个人简历 | 第142页 |
