| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 英文缩略语 | 第11-17页 |
| 第一部分 ：氧化苦参碱对铜绿假单胞菌LPS诱导的肺炎小鼠模型的作用 | 第17-36页 |
| 1 前言 | 第17-18页 |
| 2 材料与方法 | 第18-29页 |
| 2.1 实验动物和细胞系 | 第18页 |
| 2.2 主要试剂和仪器 | 第18-21页 |
| 2.2.1 主要试剂 | 第18-19页 |
| 2.2.2 主要的仪器设备 | 第19-20页 |
| 2.2.3 主要试剂的配制 | 第20-21页 |
| 2.3 实验方法 | 第21-29页 |
| 2.3.1 肺炎小鼠模型建立及动物分组 | 第21-22页 |
| 2.3.2 湿/干重法检测各组小鼠肺组织水肿程度差异 | 第22页 |
| 2.3.3 HE染色观察肺组织形态及炎症损伤 | 第22-23页 |
| 2.3.4 血球计数板方法及Wright-Giemsa染色观察各组小鼠肺泡灌洗液中炎症细胞含量 | 第23-24页 |
| 2.3.5 ELISA 检测肺组织内 TNF-α，C-反应蛋白，白介素 1β和白介素 6 含量 | 第24-28页 |
| 2.3.6 统计学分析 | 第28-29页 |
| 3 实验结果 | 第29-34页 |
| 3.1 OMT对肺炎小鼠模型的肺组织的水肿程度及形态学影响 | 第29-30页 |
| 3.1.1 肺组织的水肿程度 | 第29-30页 |
| 3.1.2 肺组织的组织形态学结果 | 第30页 |
| 3.2 OMT对肺炎小鼠模型的肺泡灌洗液中炎症细胞含量的影响 | 第30-32页 |
| 3.3 OMT对肺炎小鼠模型的肺组织炎症因子水平的影响 | 第32-34页 |
| 4 讨论 | 第34-35页 |
| 5 小结 | 第35-36页 |
| 第二部分 ：氧化苦参碱对肺炎小鼠肺组织及大鼠肺泡上皮细胞损伤模型中细胞钠离子通道的影响 | 第36-60页 |
| 1 前言 | 第36-37页 |
| 2 材料与方法 | 第37-50页 |
| 2.1 实验动物 | 第37页 |
| 2.2 主要的试剂与仪器 | 第37-40页 |
| 2.2.1 主要试剂与材料 | 第37-39页 |
| 2.2.2 主要的仪器设备 | 第39页 |
| 2.2.3 主要试剂的配制 | 第39-40页 |
| 2.3 实验方法 | 第40-50页 |
| 2.3.1 原代SD大鼠肺泡上皮细胞分离及培养 | 第40-41页 |
| 2.3.2 细胞免疫荧光鉴定原代大鼠肺泡上皮细胞 | 第41-42页 |
| 2.3.3 MTT法检测细胞增殖活性,筛选OMT最佳处理浓度 | 第42页 |
| 2.3.4 动物分组与处理 | 第42-43页 |
| 2.3.5 湿/干重法检测各组小鼠肺组织水肿程度差异 | 第43页 |
| 2.3.6 HE染色观察肺组织形态及炎症损伤 | 第43-44页 |
| 2.3.7 Real-timePCR检测钠离子通道相关基因的表达 | 第44-46页 |
| 2.3.8 Westernblotting检测钠离子通道相关蛋白的表达 | 第46-50页 |
| 2.3.9 统计学分析 | 第50页 |
| 3 实验结果 | 第50-57页 |
| 3.1 OMT对LPS诱导的原代大鼠肺泡上皮细胞的增殖影响 | 第50-52页 |
| 3.2 OMT对LPS诱导的原代大鼠肺泡上皮细胞的细胞钠离子通道的影响 | 第52-54页 |
| 3.2.1 OMT对LPS诱导的原代大鼠肺泡上皮细胞中αENaC,βENaC和γENaC的mRNA水平的影响 | 第52页 |
| 3.2.2 OMT对LPS诱导的原代大鼠肺泡上皮细胞中αENaC,βENaC和γENaC的蛋白水平的影响 | 第52-53页 |
| 3.2.3 OMT对LPS诱导的原代大鼠肺泡上皮细胞中AQP-1和AQP-5的蛋白水平的影响 | 第53-54页 |
| 3.3 OMT对肺炎小鼠肺组织中细胞钠离子通道的影响 | 第54-55页 |
| 3.3.1 OMT对肺炎小鼠肺组织中αENaC,βENaC和γENaC的mRNA水平的影响 | 第54页 |
| 3.3.2 OMT对肺炎小鼠肺组织中αENaC,βENaC和γENaC的蛋白水平的影响 | 第54-55页 |
| 3.4 钠离子通道的阻断剂Benzamil对OMT抑制小鼠肺炎作用的影响 | 第55-57页 |
| 3.4.1 肺组织的水肿程度 | 第55-56页 |
| 3.4.2 肺组织的组织形态学结果 | 第56-57页 |
| 3.5 钠离子通道的阻断剂Benzamil对OMT抑制小鼠肺炎作用的机制 | 第57页 |
| 4 讨论 | 第57-59页 |
| 5 小结 | 第59-60页 |
| 第三部分 ：氧化苦参碱对肺炎小鼠肺组织及大鼠肺泡上皮细胞损伤模型中MAPK信号通路活化的影响 | 第60-75页 |
| 1 前言 | 第60-61页 |
| 2 材料与方法 | 第61-69页 |
| 2.1 实验动物 | 第61页 |
| 2.2 主要的试剂与仪器 | 第61-63页 |
| 2.2.1 主要的试剂及材料 | 第61-62页 |
| 2.2.2 主要的仪器设备 | 第62页 |
| 2.2.3 主要试剂的配制 | 第62-63页 |
| 2.3 实验方法 | 第63-69页 |
| 2.3.1 原代SD大鼠肺泡上皮细胞分离及培养 | 第63-64页 |
| 2.3.2 原代SD大鼠肺泡上皮细胞分组及处理 | 第64页 |
| 2.3.3 动物分组与处理 | 第64-65页 |
| 2.3.4 Westernblotting检测MAPK信号通路相关蛋白的表达 | 第65-68页 |
| 2.3.5 统计学分析 | 第68-69页 |
| 3 实验结果 | 第69-73页 |
| 3.1 OMT对LPS诱导的原代大鼠肺泡上皮细胞的MAPK信号通路活化的影响 | 第69-71页 |
| 3.1.1 OMT对LPS诱导的原代大鼠肺泡上皮细胞中的MAPK信号通路相关蛋白ERK的影响 | 第69页 |
| 3.1.2 OMT对LPS诱导的原代大鼠肺泡上皮细胞中的MAPK信号通路相关蛋白p38的影响 | 第69-70页 |
| 3.1.3 OMT对LPS诱导的原代大鼠肺泡上皮细胞中的MAPK信号通路相关蛋白JNK的影响 | 第70-71页 |
| 3.2 OMT对肺炎小鼠肺组织中MAPK信号通路活化的影响 | 第71-73页 |
| 3.2.1 OMT对肺炎小鼠肺组织中的MAPK信号通路相关蛋白ERK的影响. | 第71页 |
| 3.2.2 OMT对肺炎小鼠肺组织中的MAPK信号通路相关蛋白p38的影响. | 第71-72页 |
| 3.2.3 OMT对肺炎小鼠肺组织中的MAPK信号通路相关蛋白JNK的影响. | 第72-73页 |
| 4 讨论 | 第73-74页 |
| 5 小结 | 第74-75页 |
| 本研究创新性的自我评价 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-84页 |
| 综述 | 第84-103页 |
| 参考文献 | 第93-103页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第103-104页 |
| 致谢 | 第104-105页 |
| 个人简历 | 第105页 |
