符号说明 | 第4-7页 |
中文摘要 | 第7-8页 |
Abstract | 第8页 |
1 前言 | 第9-19页 |
1.1 禾谷镰刀菌概述 | 第9-10页 |
1.2 细胞凋亡概述 | 第10-11页 |
1.3 细胞凋亡在动物与植物中的研究进展 | 第11-14页 |
1.3.1 动物细胞凋亡 | 第12-13页 |
1.3.2 植物细胞程序性死亡 | 第13-14页 |
1.4 酵母菌细胞凋亡 | 第14-16页 |
1.5 丝状真菌细胞凋亡研究进展 | 第16-18页 |
1.6 研究目的与意义 | 第18-19页 |
2 材料与方法 | 第19-34页 |
2.1 实验材料 | 第19-24页 |
2.1.1 菌株与载体 | 第19页 |
2.1.2 主要生化试剂及试剂盒 | 第19-20页 |
2.1.3 主要培养基配方 | 第20-22页 |
2.1.4 溶液与缓冲液配置 | 第22-24页 |
2.1.5 PCR引物 | 第24页 |
2.2 实验方法 | 第24-34页 |
2.2.1 禾谷镰刀菌菌种的保存与活化 | 第24-25页 |
2.2.2 禾谷镰刀菌分生孢子的收集 | 第25页 |
2.2.3 H_2O_2对禾谷镰刀菌菌落生长速度的测定 | 第25页 |
2.2.4 H_2O_2对禾谷镰刀菌分生孢子萌发的测定 | 第25页 |
2.2.5 DAPI染色 | 第25-26页 |
2.2.6 TUNEL染色 | 第26-27页 |
2.2.7 AnnexinV-FITC染色 | 第27-28页 |
2.2.8 JC-1染色 | 第28页 |
2.2.9 Metacaspase原位活性检测 | 第28-29页 |
2.2.10 Caspase广谱抑制剂Z-VAD-FMK对metacaspase活性的影响 | 第29-30页 |
2.2.11 禾谷镰刀菌metacaspase蛋白的亚细胞定位 | 第30-34页 |
3 结果与分析 | 第34-41页 |
3.1 H_2O_2抑制禾谷镰刀菌的菌落生长 | 第34页 |
3.2 H_2O_2抑制禾谷镰刀菌分生孢子的萌发 | 第34-35页 |
3.3 H_2O_2诱导禾谷镰刀菌细胞染色质浓缩 | 第35页 |
3.4 H_2O_2诱导禾谷镰刀菌细胞DNA断裂 | 第35-36页 |
3.5 H_2O_2诱导禾谷镰刀菌细胞发生细胞磷脂酰丝氨酸外翻 | 第36-37页 |
3.6 H_2O_2诱导禾谷镰刀菌细胞线粒体膜电位的改变 | 第37-38页 |
3.7 H_2O_2诱导的禾谷镰刀菌细胞凋亡依赖于metacaspase | 第38-39页 |
3.8 Metacaspases亚细胞定位 | 第39-41页 |
4 讨论 | 第41-44页 |
5 全文总结与展望 | 第44-46页 |
5.1 全文总结 | 第44-45页 |
5.2 展望 | 第45-46页 |
参考文献 | 第46-55页 |
致谢 | 第55-56页 |
攻读学位期间发表论文情况 | 第56页 |