| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略表 | 第8-11页 |
| 第一章 绪论 | 第11-25页 |
| 1.1 丛枝菌根共生 | 第11-19页 |
| 1.1.1 丛枝菌根简介 | 第11-12页 |
| 1.1.2 丛枝菌根共生的形成过程 | 第12-14页 |
| 1.1.3 丛枝菌根共生的信号通路 | 第14-18页 |
| 1.1.4 丛枝菌根共生研究的意义 | 第18-19页 |
| 1.2 植物GRAS转录因子研究进展 | 第19-22页 |
| 1.2.1 植物GRAS转录因子 | 第19-20页 |
| 1.2.2 植物GRAS转录因子的结构与分类 | 第20-21页 |
| 1.2.3 植物GRAS转录因子的生物学功能 | 第21-22页 |
| 1.3 本研究的目的和技术路线 | 第22-25页 |
| 1.3.1 研究的目的和意义 | 第22-23页 |
| 1.3.2 研究的技术路线 | 第23-25页 |
| 第二章 转录因子RAD1在丛枝菌根共生中的调控作用 | 第25-55页 |
| 2.1 引言 | 第25页 |
| 2.2 实验材料 | 第25-27页 |
| 2.2.1 植物材料 | 第25-26页 |
| 2.2.2 菌株和质粒 | 第26页 |
| 2.2.3 实验试剂 | 第26-27页 |
| 2.2.4 实验仪器 | 第27页 |
| 2.3 实验方法 | 第27-43页 |
| 2.3.1 植物的培养条件 | 第27-28页 |
| 2.3.2 植物与AMF建立共生 | 第28页 |
| 2.3.3 植物叶片DNA的提取 | 第28-29页 |
| 2.3.4 植物根中RNA的提取 | 第29页 |
| 2.3.5 RT-PCR | 第29-30页 |
| 2.3.6 目的基因片段回收 | 第30-31页 |
| 2.3.7 大肠杆菌转化 | 第31页 |
| 2.3.8 质粒提取 | 第31-32页 |
| 2.3.9 农杆菌感受态的制备及转化 | 第32页 |
| 2.3.10 农杆菌介导的水稻遗传转化 | 第32-33页 |
| 2.3.11 农杆菌注射法转化番茄子叶 | 第33页 |
| 2.3.12 转基因植株的检测 | 第33-35页 |
| 2.3.13 菌根WGA染色 | 第35页 |
| 2.3.14 水稻GUS染色 | 第35-36页 |
| 2.3.15 菌根侵染率统计 | 第36页 |
| 2.3.16 载体构建 | 第36-42页 |
| 2.3.17 GRAS基因家族的演化分析 | 第42-43页 |
| 2.4 结果与分析 | 第43-53页 |
| 2.4.1 GRAS基因的系统演化分析 | 第43-44页 |
| 2.4.2 RAD1基因受AM共生的诱导表达 | 第44-45页 |
| 2.4.3 OsRAD1启动子表达分析 | 第45-46页 |
| 2.4.4 番茄中RAD1基因沉默的表型分析 | 第46-47页 |
| 2.4.5 OsRAD1基因功能敲除突变体 | 第47-51页 |
| 2.4.6 OsRAD1基因参与AM共生中丛枝的发育过程 | 第51-53页 |
| 2.5 讨论 | 第53-54页 |
| 2.6 结论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 攻读硕士期间参与发表的论文 | 第70-71页 |
| 附录 | 第71-77页 |